Informacija

Koks yra rekomenduojamas didžiausias žinduolių ląstelių pasėlių skaičius (NCI-H441)?

Koks yra rekomenduojamas didžiausias žinduolių ląstelių pasėlių skaičius (NCI-H441)?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Ar yra visuotinai priimtas maksimalus skaičius, kiek kartų turėtumėte padalyti ir persodinti žinduolių kultūros ląsteles prieš iš naujo paleidžiant kultūras?


Tai labai geras klausimas ir išryškina labai dažną klaidingą nuomonę apie ląstelių kultūrą, o perėjimo numeriai naudojami kaip ląstelės elgsenos rodiklis. Nors tai gali būti geras barometras, tačiau jis klaidinantis. Perėjimas gali paveikti ląsteles, jei atliekamas labai dažnai, nors tai vėlgi priklauso nuo to, kaip greitai ląstelės dalijasi.

Apie pasėjimą (ir apskritai ląstelių kultūrą) neturėtumėte galvoti apie pačią procedūrą, o apie populiacijos padvigubėjimą (PD), kurį galima apskaičiuoti naudojant čia pateiktą formulę (http://www.sciencellonline.com/site/). techninė pagalba.php). Aš asmeniškai naudoju [Log10 (derliaus ląstelės Nr./Sėjos ląstelės Nr.)/Log10 (2)]. Tai turėtų leisti apibūdinti jūsų ląstelių elgesį tarp kiekvieno ištraukos ir sudaryti galimybę nubraižyti kaupiamąjį PD grafiką. Kai kaupiamasis PD, palyginti su laiku, tampa nelinijinis, žinosite, kad ląstelės pasikeitė ir galbūt būtų geriausia naudoti naują atsargą.

Pagrindinis šio metodo privalumas yra tas, kad nesiremiate spėliojimu ir sprendžiate tvirtus skaičius ir leidžia nuspėti, kada turėtumėte tikėtis pradėti naują partiją. Nors ištraukų numeriai gali atlikti tą patį darbą, jei darote prielaidą, kad kiekvienoje pertraukoje ląstelės atliko tam tikrą PD, tačiau tai yra daugiau spėlionių darbas ir jūs negalite stebėti, kaip gerai jūsų ląstelės veikia tam tikru laiko momentu. Pavyzdžiui, viena iš pagrindinių problemų, susijusių su pasažo naudojimu kaip priemonė, yra tai, kad galite perkelti ląsteles 98% santakoje į naują kolbą ir nors tai laikoma praėjimu, tačiau tai yra gana neinformatyvu ląstelių elgesio požiūriu ir nesuteikia jums jokios tvirtus skaičius, ir jūs galite tai padaryti daug kartų, ir nors būtumėte atlikę daug ištraukų, bet jūsų ląstelės atrodytų gerai. Nors toks pratimas yra beprasmis ir tikriausiai sukels stresą ląstelėms, tačiau norime tik pabrėžti, kad perėjimo skaičiai nebūtinai yra labai informatyvus ir kiekybiškai įvertinamas matas, nurodantis, kaip gerai ląstelės veikia ar elgiasi, todėl reikėtų naudoti PD ir kumuliacinį PD. Kitas privalumas yra tas, kad kadangi kalbate apie faktinį ląstelių skaičių, jei pakeitėte ląstelių kultūros kolbos dydį iš tarkime T-75 į T-25, jums nereikės jaudintis dėl pasėjimo dažnio pasikeitimų ar toliau spėliokite, kaip tai paveikė jūsų ląstelės elgseną.

Mano pagrindinis patarimas yra tas, kad bent jau pradžioje turėtumėte išlaikyti tą patį praėjimo dažnį (nors stebėkite ląstelių tankį, nes galbūt nenorite, kad ląstelės eidamos per daug susilietų ar nepatektų, priklausomai nuo pagal jūsų konkrečią metodiką ir tai, kas buvo nustatyta jūsų laboratorijoje), tačiau suskaičiuokite sėjos ir derliaus nuėmimo tankį (ląstelės Nr.) ir apskaičiuokite PD bei kaupiamąjį PD ir nubraižykite kumuliacinį PD ir laiko grafiką bei stebėkite ląstelių elgseną. Tai turėtų gerai parodyti jūsų ląstelių elgesį tokiomis sąlygomis, kuriomis dirbate su jais, nes gairės yra būtent tai, vadovai ir jie niekada negali pakeisti jūsų ląstelių eksperimentinio apibūdinimo jūsų sąlygomis ir naudojimo būdu!


Suspensinių ląstelių subkultūrinimas

Toliau pateikiami protokolai bendrosios žinduolių ląstelių subkultūros suspensijos kultūroje procedūros. Atkreipkite dėmesį, kad vabzdžių ląstelių perėjimo procedūra skiriasi nuo žinduolių ląstelių procedūros keliais svarbiais etapais. Norėdami gauti daugiau informacijos, žr Pastabos apie vabzdžių ląstelių subkultūrą.

Jei norite perduoti savo ląstelių liniją, rekomenduojame atidžiai sekti instrukcijas, pateiktas su kiekvienu produktu, kurį naudojate savo eksperimentuose. Nukrypimo nuo auginimo sąlygų, reikalingų tam tikram ląstelių tipui, pasekmės gali būti įvairios - nuo nenormalių fenotipų išraiškos iki visiško ląstelių kultūros gedimo.

Perėjimo pakabos kultūros
Subkultūros suspensijos ląstelės yra šiek tiek sudėtingesnės nei prilipusių ląstelių praleidimas. Kadangi ląstelės jau yra suspenduotos auginimo terpėje, nereikia jų fermentiškai apdoroti, kad atsiskirtų nuo auginimo indo paviršiaus, o visas procesas vyksta greičiau ir mažiau traumuoja ląsteles. Suspensijos kultūrose auginimo terpė nekeičiama, ląstelės palaikomos maitinant jas kas 2–3 dienas, kol jos susilieja. Tai galima padaryti tiesiogiai praskiedžiant ląsteles auginimo kolboje ir toliau jas plečiant arba ištraukiant dalį ląstelių iš kultivavimo kolbos, o likusias ląsteles skiedžiant iki ląstelių linijai tinkamo sėjimo tankio. Paprastai vėlavimo laikotarpis po perėjimo yra trumpesnis nei tas, kuris pastebimas naudojant prilipusias kultūras.


Ląstelių praėjimas: kaip teisingai praskiesti ir padalyti kultivuotas ląsteles

Yra daug skirtingų ląstelių kultūros metodų. Norint išlaikyti ląstelių liniją eksponentinės augimo kreivėje, svarbu naudoti teisingus ląstelių pasėjimo metodus, todėl tai yra geras modelis kaip transfekcijos eksperimentų šeimininkas. “Ląstelių perėjimas” yra terminas, kurį kiti mokslininkai vartoja norėdami parodyti šį procesą:

  1. Nuplaukite ląsteles PBS
  2. Atskirkite ląsteles nuo kolbos tripsinu
  3. Resuspenduokite pilnoje terpėje (yra FBS), kad neutralizuotų tripsiną
  4. Perpilkite atitinkamą skiedimą į naują kolbą, kurioje yra pakankamai terpės

Teisingas praskiedimas yra specifinis ląstelių linijai ir priklauso nuo tokių veiksnių kaip dvigubinimo laikas ir numatomas ląstelių naudojimas. Svarbu atsiminti, kad padalijimo santykis nustatomas pagal bendrą tripsino ir terpės tūrį, atliktą aukščiau aprašytuose 2 ir 3 žingsniuose. Pavyzdžiui, T75 kolboje, jei ląstelėms atskirti naudojamas 1 ml tripsino, o tripsinui neutralizuoti - 9 ml pilnos terpės, tada bendras suspensijos tūris yra 10 ml. Priklausomai nuo ląstelių linijos, čia yra padalijimo santykio pavyzdžiai, kuriuos tyrėjas gali vadovautis:


Procedūra

  1. Peržiūrėkite kultūras naudodami apverstą mikroskopą, kad įvertintumėte ląstelių tankio laipsnį ir patvirtintumėte, kad nėra bakterinių ir grybelinių teršalų. Surinkite ląsteles loginėje augimo fazėje. Prilipusiose ląstelių linijose surinkite ląsteles kuo arčiau 80–90 % susiliejimo.
  2. Susijusios ir pusiau prilipusios ląstelės supilamos į suspensiją, naudojant tripsiną/EDTA, kaip aprašyta anksčiau, ir pakartotinai suspenduokite šviežios terpės kiekyje, bent jau lygiaverčiame tripsino tūriui. Suspensijos ląstelių linijos gali būti naudojamos tiesiogiai.
  3. Išimkite nedidelę ląstelių alikvotinę dalį (100–200 μL) ir suskaičiuokite ląsteles. Idealiu atveju ląstelių gyvybingumas turėtų viršyti 90%, kad po užšalimo būtų pasiektas geras atsigavimas.
  4. Likusią kultūrą centrifuguokite 150 x g 5 minutes.
  5. Pakartotinai suspenduokite ląsteles 2-4x106 ląstelių viename ml koncentracijos užšaldymo terpėje.
  6. Pipete supilkite 1 ml ląstelių alikvotas į krioprotekcines ampules, kurios buvo paženklintos ląstelių linijos pavadinimu, pasažo numeriu, partijos numeriu, ląstelių koncentracija ir data.
  7. Įdėkite ampules į pasyvų šaldiklį, pvz. „Nalgene Mr. Frosty“ šaldymo konteineris. Užpildykite šaldiklį izopropilo alkoholiu ir padėkite -80 ° C temperatūrai per naktį.
  8. Užšaldytos ampulės turi būti perkeltos į skysto azoto laikymo indo garų fazę ir užrašomos jų vietos.

„Bright-Line“ yra „Cambridge Instruments, Inc.“ prekės ženklas.
Nalgene yra registruotasis Thermo Fisher Scientific arba jos antrinių įmonių prekės ženklas


Skysto azoto saugos svarstymai

Bendrosios saugos problemos

Svarbu, kad darbuotojai būtų apmokyti naudoti skystą azotą ir susijusią įrangą, įskaitant talpyklas, kurias reikia saugiai išvėdinti, ir talpyklas, kurias gali tekti užpildyti. Kaip ir atliekant visas laboratorines procedūras, dirbant su azotu, visada reikia dėvėti asmenines apsaugos priemones, įskaitant visą veidą dengiantį skydelį ir termiškai izoliuotas pirštines, ne tik laboratorinį chalatą, bet ir, pageidautina, purslams atsparią plastikinę prijuostę. Tinkamas mokymas ir apsauginių priemonių naudojimas sumažins nušalimo, nudegimų ir kitų nepageidaujamų incidentų riziką.

Uždusimo pavojus

Vienintelis svarbiausias saugos aspektas yra galimas uždusimo pavojus, kai išbėgęs azotas išgaruoja ir išstumia atmosferos deguonį. Tai labai svarbu, nes deguonies išeikvojimas gali labai greitai be įspėjimo prarasti sąmonę. Vadinasi, skysto azoto šaldytuvai turi būti statomi gerai vėdinamose vietose, kad būtų sumažinta ši rizika, ir jiems būtų taikoma suplanuota prevencinė priežiūra. Didelės apimties parduotuvėse turėtų būti signalizacijos sistemos, kuriose mažai deguonies.


Pirminės ląstelių linijos

Pirminės ląstelių linijos yra gaunamos tiesiogiai iš iškirptų audinių ir kultūrų kaip eksplantato kultūra arba po disociacijos į vienos ląstelės suspensiją virškinant fermentais. Tokios kultūros iš pradžių yra nevienalytės, bet vėliau jose dominuoja fibroblastai. Pirminių kultūrų paruošimas reikalauja daug darbo jėgos ir jas galima išlaikyti in vitro tik ribotą laiką. Per savo santykinai ribotą gyvenimo trukmę pirminės ląstelės paprastai išlaiko daugybę diferencijuotų ląstelės savybių in vivo. Svarbi pastaba: pirminės kultūros pagal apibrėžimą nebuvo paskirstytos, kai tik pastos, jos tampa ląstelių linija ir nebėra pirminės.


Ląstelių augimo įvertinimas

Tikslus ląstelių skaičiavimas yra itin svarbus vertinant ląstelių augimą kultūrose, nes klaidingas skaičiavimas gali lemti klaidingas išvadas apie ląstelių sveikatą. Ląstelių skaičių galima nustatyti naudojant hemocitometrą. Tačiau automatiniai ląstelių skaitikliai, kuriuose naudojamas Coulter principas, kai ląstelės po vieną teka per angą, esančią elektrinio jutiklio viduje, duoda tiksliausią ląstelių skaičių.

2 pav. Scepter™ 2.0 rankinis automatinis ląstelių skaitiklis


Ląstelių užšaldymas ir atšildymas

Kaip užšaldyti ląsteles

  • kultivuojamos ląstelės
  • ląstelių augimo terpė
  • tirpalai ląstelėms atskirti nuo plokštelės, jei naudojamos prilipusios ląstelės (pvz., subalansuotas druskos tirpalas, tripsinas/EDTA)
  • audinių kultūros laipsnio dimetilsulfoksidas (DMSO)
  • galvijų vaisiaus serumas (FBS)
  • kriauklės
  • ląstelių šaldymo kamera
  • -80°C šaldiklis
  • skystas N2 rezervuaras ilgalaikiam saugojimui.

1. Praėjimo ląstelės

Kriokonservavimui turėtų būti naudojamos sveikos, aktyviai augančios ląstelės. Aš visada stengiuosi užšaldyti daugybę ląstelių, kurios nebuvo per daug kartų perimtos kultūroje.

Ląsteles pervedu 1–2 dienas prieš užšaldymą, kad įsitikinčiau, jog užšalimo metu jos yra logritminėje augimo fazėje.

Kai kurios laboratorijos rekomenduoja pakeisti auginimo terpę likus 24 valandoms iki užšaldymo, jei ląstelės tuo metu nebuvo paskirstytos.

2. Paruoškite ląsteles

Pašalinkite ląsteles iš indų, naudodami įprastą prilipusių ar suspensijos ląstelių praleidimo metodą. Sujunkite visas ląsteles ir centrifuguokite.

3. Pakartotinai suspenduokite ląsteles šaldymo terpėje ir paskirstykite alikvotą į kriovialius

Ląstelių užšalimas gali būti mirtinas. Siekiant išvengti žalos, kurią gali sukelti, pavyzdžiui, ledo kristalų susidarymas, osmosinis stresas ar membranos pažeidimas, naudojamas krioprotektorius, siekiant sumažinti ląstelių ir užšalimo temperatūrą.

DMSO, kaip 10% pradinis tirpalas, yra dažniausiai naudojamas krioprotektantas.

Atsargiai: dirbdami su DMSO mūvėkite pirštines, nes jis lengvai prasiskverbia per odą.

Dažniausia šaldymo terpė yra 90 % FBS/10 % DMSO. Mažiau smulkioms ląstelėms ir audinių kultūrai už biudžetą taip pat galima naudoti 10 % DMSO ląstelių auginimo terpėje.

Po centrifugavimo ląstelių nuosėdas pakartotinai suspenduokite 1 ml šaldymo terpės kiekviename kriovialyje.

Įsitikinkite, kad turite kriovialius, skirtus skystam N2 saugykla. Paprastai vienam kriovialui planuoju 1 100 mm ląstelių lėkštelę. Buteliukai turi būti ženklinami naudojant laboratorinį žymeklį, kuris atlaikytų alkoholį ir skystą N2.

Būkite atsargūs ir įtraukite ištraukų / partijų numerius, kai ženklinate kriovialius.

4. Užšaldykite ląsteles

Kad vanduo prieš iššalimą galėtų išeiti iš ląstelių, lėtai užšaldykite ląsteles. Tai pasiekiama naudojant ląstelių šaldymo kamerą. Brangios šaldymo kameros pulsuoja skystu N2 periodiškai kontroliuoti užšalimo greitį.

Tarp pigesnių variantų yra kameros, kuriose naudojamas kambario temperatūros izopropanolis. Buteliukai dedami į kamerą, įpilama izopropanolio ir kameros bent 4 valandoms laikomos –80°C temperatūroje.

Tie iš mūsų, kurių biudžetas yra mažas (kaip aš!), naudoja namines kameras. Aš laikau Styrofoam™ stelažus su 15 ml kūgiais, į kiekvieną angą įdedu kriovialą, uždengiu antrąja lentyna, suklijuoju lentynas ir dedu į –80°C.

5. Nepamirškite perkelti savo ląstelių į skystą N2 Tankas

Turbūt vienas sunkiausių dalykų šiame protokole yra nepamiršti perkelti užšaldytus kriovialus į skystą N.2 tankas! Paprastai leidžiu savo ląstelėms sustingti per naktį, o tada greitai įdedu kriovialus į skystą N2 bakas.

Kaip atšildyti ląsteles

1. Išimkite ląsteles iš rezervuaro ir atšildykite

Kad ląstelės būtų gyvybingiausios, svarbu jas lėtai užšaldyti. Atšildymo atveju yra priešingai - greitai atšildykite! Išimkite kriovialus iš skysčio N2 baką ir nedelsiant įdėkite juos į 37 ° C vandens vonią.

Laikykite kriovialius vandens vonioje, kol kriovialelyje liks tik mažiausias ledo kristalas.

2. Perkėlimas, sukimas (?) ir plokštelė

Nedelsdami perkelkite ląsteles į didelį kiekį iš anksto pašildytos ląstelių auginimo terpės (

10 ml/1 ml ląstelių alikvotinė dalis). Dėl kito žingsnio turite priimti sprendimą.

Egzistuoja dvi mintys apie tai, ar krioprotektantą reikia nedelsiant pašalinti iš ląstelių:

  1. Kai kuriose laboratorijose ląstelės centrifuguojamos, o ląstelių nuosėdos resuspenduojamos šviežioje ląstelių auginimo terpėje prieš dedant ląsteles į auginimo lėkštelę. Taip aš pirmą kartą išmokau atšildyti ląsteles.
  2. Tačiau kai kurie duomenys rodo, kad po atšildymo ląstelės yra labai trapios ir kad centrifugavimas gali padidinti ląstelių mirtį. Todėl rekomenduojama ląsteles pasodinti ir vėliau pakeisti auginimo terpę.

Prilipusių ląstelių atveju galite pakeisti terpę, kai tik ląstelės prisitvirtins prie lėkštelės.

Perėjau prie šio metodo ir dabar paprastai išimu ląsteles prieš pat išeidamas iš laboratorijos nakčiai, o kitą rytą pirmiausia pakeičiau terpę.

3. Patikrinkite savo ląsteles

Praėjus maždaug 24 valandoms po atšildymo, aš atidžiai apžiūriu savo ląsteles po mikroskopu, kad įsitikinčiau, ar jos yra sveikos ir normaliai elgiasi.

Santrauka

Veiksmingai užšaldę ir atšildydami ląsteles išvengsite gėdos prašyti kolegos dar vieno jų ląstelių alikvoto ar naujų ląstelių įsigijimo išlaidų.

O jei visa kita nepavyks, nepamirškite lėtai užšaldyti ir greitai atšildyti! Norėdami sužinoti daugiau apie šaldymą, peržiūrėkite mūsų straipsnį apie mikroorganizmų išsaugojimą. Praneškite mums apie savo geriausius patarimus, kaip užšaldyti ir atšildyti ląsteles!

Iš pradžių paskelbta 2013 m. balandžio 3 d. Peržiūrėta ir atnaujinta 2021 m. gegužės mėn.

Ar tai jums padėjo? Tada pasidalinkite su savo tinklu.

6 komentarai

Aš dirbu su CHO suspensijos ląstelėmis, mūsų įstaigoje -196 nėra vietos laikyti užšaldytas ląsteles. Taigi
1. Ar galime laikyti užšaldytas CHO ląsteles -80?
2. Koks yra tinkamas ląstelių skaičius užšaldyti?

Kiek laiko galime laikyti CHO suspensijos ląsteles -80 temperatūroje?

Priklauso nuo to, ar turite krioprotektorių. Tačiau paprastai jie gali trukti labai ilgai.

Ar turite informacijos apie tai, kiek ląstelių reikia įdėti į tam tikro dydžio kolbą?

Tai tikrai priklauso nuo naudojamų ląstelių tipo. Jie gali būti labai skirtingų dydžių.
Kartais galite susidaryti idėją pažvelgę ​​į ATCC svetainę ir pažvelgti į kultūros sąlygas.

Užšaldžius atšildymą, į kolbą įdedu tiek ląstelių, kiek buvo kolboje, kai nuėmiau derlių.
Jei manote, kad jūsų ląstelės blogai išgyvens užšalusios, galite jas sudėti į mažesnę kolbą.
Rebeka

Kažkoks vaikinas, kuris gamino transgenines peles, mane išmokė lėtai pridėti DMSO į šaldymo terpę. Tai leidžia ląstelėms priprasti prie DMSO, nes jis yra toksiškas ląstelėms, ypač esant aukštesnei temperatūrai. Dabar aš naudoju 2 dalis terpės savo ląstelėms užšaldyti. Naudoju įprastą terpę (DMEM, 10 % FCS, Gentamicinas) ląstelėms pakartotinai suspenduoti ir 2 kartus užšaldyti terpėje (DMEM, 30 % FCS, 20 % DMSO, Gentamicinas). Išcentrifugavęs ląsteles, aš resuspenduoju ląsteles pusėje galutinio tūrio įprastoje ledinėje terpėje ir palaipsniui įpilu ledo šaltos 2x užšaldymo terpės, sukiodamas ląsteles tarp kiekvieno pridėjimo. Aš laikau ląsteles ant ledo, kad jos būtų vėsios, kol nukris iki -80C (bet kokiame turimame inde).

Atitirpinimo daliai aš atšildau ląsteles 37C vandens vonioje ir dedu ant ledo, kai ledo vamzdelyje beveik nebeliks. Tada ląstelės supilamos į ledinį 14 ml Falcon mėgintuvėlį ant ledo ir palaipsniui įpilama ledo šalto DMEM, 10 % FCS, Gentamicino, vėl sukant tarp kiekvieno pridėjimo. (Aš dažniausiai naudoju 6 ml, bet jei norite, galite pridėti daugiau). Susukus ląsteles, aš resuspenduoju ląsteles kambario temperatūros DMEM, 10% FCS, Gentamicino ir dedu į inkubatorių.

Tai gali atrodyti pernelyg sudėtinga (kai kurioms ląstelių linijoms tikrai taip), bet jei kiekvieną kartą turite laukti, kol jūsų ląstelės bus sveikos, kad galėtumėte eksperimentuoti, tai gali būti tiesiog verta pastangų. Sėkmės!


REAGENTAI IR TIRPALAI

HEPES buferis, 50 mM (pH 8,0)

  • 238,3 g HEPES (laisvoji rūgštis, pvz., Sigma-Aldrich, kat. Nr. H3375)
  • 800 ml Milli-Q vandens
  • Sureguliuokite pH iki 8,0 naudodami 10 N NaOH
  • Tūrį padidinkite iki 1000 ml Milli-Q vandeniu

Laikyti kambario temperatūroje iki 1 metų

Paruoštas tirpalas yra 1 M HEPES pradinis tirpalas. Prieš naudodami 20 kartų praskieskite Milli-Q vandeniu, kad paruoštumėte 50 mM tirpalą.

PEG 8000, 50 proc.

  • 250 g PEG 8000 (pvz., Sigma-Aldrich, kat. Nr. 89510-250G-F)
  • 250 ml Milli-Q vandens
  • Pašildykite iki 80 ° C, kad ištirptų PEG 8000
  • Leiskite tirpalui atvėsti
  • Laikyti kambario temperatūroje iki 2 mėnesių

PEI, 1 µg/µl

  • 1. Ištirpinkite PEI (pvz., „Polysciences“, kat. Nr. 23966-1) sukiodami sterilų vandenį, pašildytą iki 80 °C, ir naudodami ~90 % tūrio, reikalingo galutinei 1 g/l (1 µg/µl) koncentracijai pasiekti. .
  • 2. Atvėsinkite iki kambario temperatūros.
  • 3. Sureguliuokite pH iki 7,0 su HCl.
  • 4. Įpilkite sterilaus vandens iki galutinės 1 µg/µl koncentracijos.
  • 5. Filtruokite naudodami 0,22 µm membraninį filtrą ir padalinkite į alikvotines dalis. Laikyti –20°C temperatūroje iki 1 metų.
  • 6. Atšildykite 37°C vandens vonioje, kol nuosėdos visiškai ištirps.

7. Atšildytą alikvotinę dalį laikykite 4°C temperatūroje iki 1 mėnesio.

Prieš naudojimą nuosėdos iš naujo ištirpinamos inkubuojant 37 ° C temperatūroje.


Kyla pagunda iškart pradėti eksperimentuoti tuo metu, kai atvyksta jūsų ląstelės. Tiesą sakant, gali prireikti šiek tiek laiko, kad suprastumėte, kaip elgsis jūsų ląstelės. Ne kiekviena alikvotinė dalis yra lygi, net jei šaltinis yra tas pats. Verta skirti laiko įgyvendinti kiekvieną strategiją, reikalingą, kad jūsų darbas būtų kuo nuoseklesnis ir tikslesnis.

„LabAG by GA International“ yra pirmaujanti aukštos kokybės specialių etikečių gamintoja air identifikavimo sprendimų, naudojamų mokslinių tyrimų ir medicinos laboratorijose, bei sveikatos priežiūros įstaigų tiekėjas.


Žiūrėti video įrašą: Lithuanian animals. Lietuvos gyvūnai (Sausis 2023).