Informacija

Ar žinote, kas yra šis raudonas augalas?

Ar žinote, kas yra šis raudonas augalas?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Aš gyvenu pietinėje centrinėje Indianoje, JAV, ir jie ką tik pradėjo pasirodyti mano kiemo žolėje. Aš ką tik nusipirkau šį namą praėjusį rudenį, todėl niekada jų nemačiau. Ar kas nors žino, kas jie yra? Ar jie kenkia šunims?


Mes jas vadinome „indiškomis braškėmis“. Jie taip pat žinomi kaip „Mock Strawberry“ (Duchesnea indica). Išgyvenantieji yra gerai susipažinę su šiuo augalu.

Išvaizda jos labai panašios į braškes, tačiau uogos apvalesnės, ne smailėjančios, o ant stiebo laikomos stačiai (smailia į viršų), nelaukdamos. Nors uogos yra valgomos, jos neturi daug skonio. Lapai taip pat panašūs, o gėlė geltona, ne balta. Vaisiaus sėklos yra tokios pat spalvos kaip vaisiaus. Jie žydi vėlyvą pavasarį ir visą vasarą. Atrodo, kad jūsų egzempliorius buvo kažkada nugraužtas. Šios uogos vidus baltas, savotiškas kempingas ir sausas (ypač lyginant su tikrosiomis, ty laukinėmis braškėmis). Kotelis ant kurio yra plaukuotas (kaip ir turi būti), bet pažeistas, matosi tik viena lapelio dalis. tavo nuotraukoje.

Jie priklauso Rožių šeimai, tačiau diskutuojama apie tai, kokiai genčiai jie iš tikrųjų priklauso; gali būti panašesnis į Potentilla.

Taip pat žr. http://www.sierrapotomac.org/W_Needham/IndianStrawberry_080617.htm


Virusinės infekcijos simptomai augaluose

Tai yra pirmieji simptomai ir yra vietinės reakcijos inokuliacijos vietoje rezultatas. Šie simptomai pasireiškia vietinių pažeidimų ir venų išsivalymo forma. Vietiniai pažeidimai atsiranda dėl mažo ploto ląstelių mirties inokuliacijos vietoje. Atliekant venų valymą, jaunų lapų venos išryškėja dėl audinių išvalymo ar chlorozės jame arba šalia jo.

B) Sisteminiai simptomai:

Tai apima didžiąją dalį arba visą augalą.

Pagrindiniai sisteminiai simptomai yra:

Jai būdingas netolygus chlorofilo pasiskirstymas geltonomis ir žaliomis lapų dėmėmis. Šios dėmės netaisyklingai pasiskirsto tarp normalių žalių audinių ir sudaro mozaikinį raštą. Tai dažniausiai pasitaikantis simptomas, kurį sukelia įvairūs virusai, pvz., agurkų mozaika, bulvių mozaika, cukranendrių mozaika, tabako mozaika (1 pav.) ir kt.

Dėl šio simptomo atsiranda vienoda lapų chlorozė, pvz., Ryžių geltonumas.

iii) nekrozė (ląstelių mirtis):

Esant tokio tipo simptomams, užkrėsta augalo dalis, ląstelių grupė suyra, paruduoja ir miršta. Jis pasireiškia įvairiomis formomis. Kai kurie virusai paveikia audinį inokuliacijos vietoje, sukeldami vietinį skilimą, tai vadinama vietine nekroze. Kartais nekrozė apima lapų parenchimą ir venas ir vadinama juostele. Greitas viso augalo viršūnės pumpurų ar šakų žudymas yra žinomas kaip viršutinė nekrozė, pvz., tabako nekrozė, pomidorų juostelė ir kt.

Ant užkrėstų lapų šis simptomas pasireiškia lokalizuotomis dėmėmis. Šios dėmės susideda iš įvairių tipų chlorozės ir nekrozės. Dėmės gali būti apskritos chlorotinės sritys ir vadinamos chlorotinėmis žiedinėmis dėmėmis. Kitais atvejais nekrozė gali atsirasti žiedais, besikeičiančiais su įprastais žaliais plotais. Tokios dėmės vadinamos nekrozinėmis žiedinėmis dėmėmis, pavyzdžiui, tabako žiedo dėmių liga.

Tai dažnas virusinių ligų simptomas. Šiam simptomui būdingas lapų išdėstymo simetrijos pakitimas, lapo kraštų susiraukšlėjimas, lapų slinkimas ir lapų atstatymas, pvz., bulvių lapų ritinys, papajų lapų susisukimas, pomidorų lapų susisukimas ir kt. Kartais lapai sumažėja. dydžio, ties tarpubambliais ir susidaro iškreiptų ūglių sankaupa. Ji vadinama raganų šluota.

Šiam simptomui būdingas lapų, vaisių, lapkočių ir tarpubamblių dydžio sumažėjimas, pvz., pupelių geltonoji mozaika, bananų viršūnė ir kt.

vii) Žiedų lūžinėjimas ir žalinimas:

Šis simptomas pasižymi patrauklia gėlių spalvos marga. Tai vadinama gėlių spalvos lūžinėjimu, pvz., tulpių, abutilono ir kt. Kartais žiedlapiai tampa žali dėl virusinės infekcijos ir tai vadinama virescencija.

Plaukų pavidalo išauga atsiranda ant lapų ir stiebų ir tt Šie išaugimai žinomi kaip entacijos, pavyzdžiui, Dolichos entation mozaika.

ix) ataugų auginimas:

Užkrėstose vietose atsiranda įvairių tipų nenormalūs augliai, pvz., navikai, patinimas ir kalvos, pavyzdžiui, Fidžio cukranendrių liga, tabako lapų garbanojimo liga ir kt.

Užkrėstų augalų šoninės šaknys išdžiūvo, šaknyse susidaro per daug auglių ir tulžies pūslių, pvz., žirnių žaizdų navikų liga.

Vidiniai virusinės infekcijos simptomai:

Tai yra dviejų tipų:

A) Histologiniai simptomai:

Užkrėstų augalų augimas ir diferenciacija sulėtėja.

Užkrėstiems augalams būdingas pernelyg didelis audinių augimas ir nenormalus vystymasis dėl padidėjusio ląstelių skaičiaus.

Ląstelės ar audiniai miršta, taip pat gali būti matomi kai kurie kiti histologiniai pokyčiai. Floemo ląstelės išsigimsta arba miršta, ant floemo sieto plokštelių susidaro kaliozės nusėdimas. Ksilemo elementuose susidaro tilozės. Ksilemo elementai sukuria būdingas žymėtas sruogas, kurios yra žinomos kaip endoląsteliniai kordonai.

B) Citologiniai simptomai:

Pagrindinis citologinis virusinės infekcijos simptomas yra tarpląstelinių inkliuzinių kūnų, kurie yra dviejų pagrindinių tipų (a) kristaliniai ir (b) amebiniai amorfiniai kūnai, išsivystymas. Pastarieji taip pat žinomi kaip X kūnai. Tiksli šių kūnų prigimtis nėra žinoma.

Šie kūnai yra paplitę lapų ir stiebų epidermio ląstelėse. Jų taip pat yra šaknyse, žieduose ir daugumoje audinių, išskyrus floemo sieto elementą. Buvo pranešta, kad kūnai buvo užkrėstuose augaluose, užkrėstuose TMV, tabako žiedinėmis dėmėmis, ropių geltonosiomis mozaikomis, bulvių virusu ir Hyosyamus mozaikos virusu ir kt.

Daugeliu atvejų užkrėstų augalų simptomai atsiranda dėl sinergetinio arba kombinuoto dviejų ar daugiau virusų veikimo. Pavyzdžiui, Rugose bulvių mozaika atsiranda dėl užsikrėtimo dviem virusais, būtent bulvių virusu X ir bulvių virusu Y.


Abstraktus

  • VanCleave, J. 1993. Janice VanCleave A+ projektai biologijoje. Niujorkas, NY: John Wiley & Sons, Inc. Spausdinti.
  • Vecchione, G. 2001 m. 100 apdovanojimus pelniusių mokslo mugės projektų. Niujorkas, NY: Sterling Publishing. Spausdinti.
  • Koningas, R. (n.d.). Sėklų daigumas. Augalų fiziologijos informacijos svetainė. Gauta 2012 m. vasario 28 d. iš http://plantphys.info/seedg/seed.html
  • Kennell, H. (2007, vasaris). Sėklų paleidimas. Vašingtono valstijos universitetas: Snohomish apygardos pratęsimas. Gauta 2014 m. spalio 29 d. iš http://ext100.wsu.edu/snohomish/wp-content/uploads/sites/11/2012/11/9SeedStarting.pdf
  • Angareris, R. (n.d.). Kukurūzų daigumas. Augalai judesyje. Gauta 2012 m. vasario 28 d. iš http://plantsinmotion.bio.indiana.edu/plantmotion/earlygrowth/germination/corn/corngerm.html

Kas yra raudonasis potvynis?

VAIZDO ĮRAŠAS: sužinokite apie „raudonuosius potvynius“ ir žmonių sveikatą šiame vaizdo įraše iš JAV integruotos vandenyno stebėjimo sistemos ®.

Kenksmingas dumblių žydėjimas arba HAB atsiranda, kai dumblių ir paprastų augalų kolonijos, gyvenančios jūroje ir gėlame vandenyje, nekontroliuojamos ir daro toksišką ar žalingą poveikį žmonėms, žuvims, vėžiagyviams, jūros žinduoliams ir paukščiams. Žmonių ligos, kurias sukelia HAB, nors ir retos, gali būti sekinančios ar net mirtinos.

Nors daugelis žmonių šiuos žydėjimus vadina „raudonaisiais potvyniais“, mokslininkai pirmenybę teikia terminui žalingas dumblių žydėjimas. Vienas iš geriausiai žinomų HAB šalyje vyksta beveik kiekvieną vasarą Floridos ir rsquos įlankos pakrantėje. Šį žydėjimą, kaip ir daugelį HAB, sukelia mikroskopiniai dumbliai, gaminantys toksinus, dėl kurių žūva žuvys ir vėžiagyviai tampa pavojingi valgyti. Toksinai taip pat gali apsunkinti aplinkinio oro kvėpavimą. Kaip rodo pavadinimas, dumblių žydėjimas dažnai nuspalvina vandenį raudonai.

Apie HAB pranešta visose JAV pakrantės valstijose, todėl jų paplitimas gali didėti. HAB yra nacionalinis rūpestis, nes jie turi įtakos ne tik žmonių sveikatai ir jūrų ekosistemoms, bet ir vietos bei regionų ekonomikos „sveikatai“.

Tačiau ne visi dumblių žydėjimai yra kenksmingi. Iš tikrųjų dauguma žydėjimo yra naudingi, nes maži augalai yra vandenyno gyvūnų maistas. Tiesą sakant, jie yra pagrindinis energijos šaltinis, kuris maitina vandenyno maisto tinklą.

Tačiau nedidelė dalis dumblių gamina galingus toksinus, kurie gali nužudyti žuvis, vėžiagyvius, žinduolius ir paukščius ir gali tiesiogiai arba netiesiogiai sukelti žmonių ligas. HAB taip pat apima netoksiškų rūšių žydėjimą, turintį žalingą poveikį jūrų ekosistemoms. Pavyzdžiui, kai žūsta ir suyra dumblių masės, irimo procesas gali išeikvoti deguonį vandenyje, todėl vandenyje taip sumažėja deguonies, kad gyvūnai arba palieka teritoriją, arba miršta.

Nacionalinės vandenynų tarnybos mokslininkai daugelį metų stebėjo ir tiria šį reiškinį, siekdami nustatyti, kaip aptikti ir prognozuoti žydėjimo vietą. Tikslas yra iš anksto įspėti bendruomenes, kad jos galėtų tinkamai planuoti neigiamą poveikį aplinkai ir sveikatai, susijusį su šiais „raudonojo potvynio“ įvykiais.


Mendelio kryžiai

Mendelis koncertavo hibridizacijos, kurių metu poruojami du skirtingų savybių turintys individai. Žirniuose, kurie natūraliai apsidulkina, tai daroma rankiniu būdu perkeliant vienos veislės subrendusio žirnio augalo žiedadulkes į atskiro subrendusio antrosios veislės žirnio augalo stigmą. Augaluose žiedadulkės perneša vyriškąsias lytines ląsteles (spermatozoidus) į stigmą – lipnų organą, kuris sulaiko žiedadulkes ir leidžia spermatozoidui judėti žemyn į apatines moteriškąsias lytines ląsteles (kiaušialąstes). Kad žiedadulkes gaunantis žirnis neapvaisintų ir nesujauktų rezultatų, Mendelis kruopščiai pašalino visus žiedadulkes nuo augalo žiedų, kol jie dar nespėjo subręsti.

Pirmos kartos kryžminant naudojami augalai buvo vadinami P0, arba tėvų pirmosios kartos, augalai (3 pav.). Mendelis surinko sėklas, priklausančias P0 augalų, kurie atsirado po kiekvieno kryžiaus, ir užaugino juos kitą sezoną. Šie palikuonys buvo vadinami F1, arba pirmoji giminė (filialas = palikuonys, dukra ar sūnus), karta. Kai Mendelis ištyrė F. charakteristikas1 augalų kartos, jis leido jiems natūraliai apvaisinti. Tada jis surinko ir išaugino sėklas iš F1 augalams gaminti F2, arba antroji giminė, karta. Mendelio eksperimentai apėmė F2 kartos iki F3 ir F4kartos ir pan., tačiau tai buvo P charakteristikų santykis0−F1−F2 kartos, kurios buvo labiausiai intriguojančios ir tapo Mendelio postulatų pagrindu.

3 pav. Viename iš paveldėjimo modelių eksperimentų Mendelis sukryžmino augalus, kurie buvo tikri violetinės spalvos žiedų spalva, su augalais, kurie iš tikrųjų buvo veisiami baltos spalvos žiedams (P0 karta). Gauti hibridai F1 kartos visi turėjo violetinius žiedus. F2 kartos, maždaug trys ketvirtadaliai augalų žydėjo violetiniais žiedais, o vienas ketvirtadalis – baltais žiedais.


3. Rafflesia: dar viena "Lavono gėlė"

Mokslinis vardas: Rafflesia arnoldii

Vieta: Indonezija

Apie augalą: Dėl savo kvapo Rafflesia yra dar viena „lavono gėlė“ (pažadu, tai paskutinis augalas, kvepiantis lavonu). Ji unikali tuo, kad yra didžiausia pasaulyje 2019 m. viena gėlė. Jis taip pat gudrus, nes neturi stiebų, lapų ar šaknų, nors atrodo, kad tai kažkoks augalas. Kai kurie mano, kad tai susiję su grybais. Kew botanikos sodo svetainėje ji priskiriama Equisetopsia klasei (susijusi su asiūkliais), tačiau Vikipedija priskiria ją Malphigiales klasei (didelė kategorija, įskaitant gluosnius ir linus).

Ar norite rasti tokį, kad galėtumėte jį pasodinti savo kieme? Aš taip pat. Tačiau juos labai sunku rasti. Didžiąją savo gyvenimo dalį jie gyvena kaip nepastebimos parazitinio audinio sruogos ant Tetrastigma vynmedžių tropiniuose atogrąžų miškuose, kol iš sruogų išsivysto nedidelis nepastebimas pumpuras, kuris kelias trumpas dienas sprogstamai virsta bauginančiu augalu, kurį matote toliau pateiktame paveikslėlyje.

Rafflesia arnoldii, didžiausia pasaulyje gėlė


6 populiariausi osmoso eksperimentai (su diagrama)

Šie punktai pabrėžia šešis svarbiausius augalų osmoso eksperimentus. Kai kurie eksperimentai yra šie: 1. Osmoso reiškinio demonstravimas 2. Osmoso demonstravimas osmoskopais 3. Plazmolizės demonstravimas ir izotoninės koncentracijos nustatymas. 4. Integruotų augalų audinių osmosinio slėgio ir kt. nustatymas.

1 eksperimentas

Osmoso reiškinio demonstravimas:

Paimamas mažas piltuvas ir jo plati burna uždaroma pergamento arba kiaušinio plėvelės gabalėliu. Tada jis visiškai užpildomas 1 ml gliukozės tirpalo (180 06 g/l). 10 ml pipetės nosis guminiu vamzdeliu pritvirtinamas prie piltuvo koto.

Cukraus tirpalo lygis padidinamas iki matomos žymės, lašas po lašo per atvirą pipetės galą įpilant daugiau cukraus tirpalo. Tada prietaisas dedamas ant stiklinės, kurioje yra grynas vanduo, ir stipriai užspaudžiamas. Cukraus tirpalo lygio padidėjimas pastebimas tam tikrais intervalais.

Cukraus tirpalo lygis pipetėje didėja palaipsniui. Šio padidėjimo greitis laikui bėgant mažėja. Teigiamas gliukozės testas (plytų raudonas ppt.) gaunamas, kai vandens alikvotinė dalis iš stiklinės tiriama su Fehling tirpalu (Fehling A mišinys, kuriame yra 35 g GUSO4 plius 500 ml vandens ir Fehling B, kuriame yra 50 g NaOH plius 173 g Rochelle druskos ir 500 ml vandens, lygiomis dalimis, įpilkite tiriamojo tirpalo ir stipriai pakaitinkite).

Iš šios patirties galima padaryti tokias išvadas:

a) Cukraus tirpalas pipete pakyla, nes susikaupia vandens molekulės, kurios dėl endosmozės praeina pro pusiau pralaidžią membraną.

b) vandens kaupimasis atskiedžia cukraus tirpalo osmosinį kūgį. Taigi cukraus tirpalo lygio padidėjimo pipetėje greitis laikui bėgant mažėja.

c) Teigiama cukraus reakcija stiklinės vandenyje rodo, kad kai kurios cukraus molekulės taip pat išėjo per membraną egzosmoso būdu, nes membrana nėra iš tikrųjų pusiau laidi, bet skirtingai pralaidi.

2 eksperimentas

Osmoso demonstravimas osmoskopais:

Vidinis kiaušinio turinys ištraukiamas per mažą skylutę, padarytą viename jo gale. Tb gauti pusiau pralaidžią membraną, maždaug trečdalis apvalkalo panardinama į konc. HCL labai atsargiai.

Rūgštis ištirpdo apvalkalą (sudarytą iš CaCO2) atidengiant kiaušinio vidinę mem&shibraną. Tada jis gerai nuplaunamas vandeniu, nepažeidžiant pusiau pralaidžios membranos. Vieno mililitro pipetės nosis įkišama per korpuso angą tam tikru atstumu, vengiant sąlyčio su membrana, ir užsandarinama sandarinimo vašku arba laku.

Kiaušinis per atvirą pipetės galą pripildomas stipriu 1 M sacharozės tirpalu (342,30 g/litre), o lygis nustatomas iki matomos pipetės žymės, kuri pažymima. Dabar įrenginio kiaušinio membrana panardinama į stiklinę su grynu vandeniu ir vertikaliai užspaudžiama (3 pav.).

Po kurio laiko pipetės viduje esantis skystis pakyla. Šis padidėjimas laikui bėgant mažėja.

N.B. Kiaušinio osmoskopą patalpinus į izotoninę terpę, pipetėje skystis nekils hipotoninėje terpėje lygis kils dėl endosmozės, o hipertoninėje terpėje skysčio lygis kris dėl egzosmoso.

Didelis bulvių gumbas pirmiausia nulupamas ir supjaustomas į stačiakampę ir ploną formą. Gumbo centre kamštinio grąžto ir skalpelio pagalba padaromas paprastas šulinys, nepraduriant kitos pusės. Po to šis bulvių osmoskopas iki pusės pripildomas 1 M sacharozės tirpalo, jo lygis pažymimas smeigtuku ir įdedamas į tyro vandens talpyklą.

Po kurio laiko skysčio lygis osmoskope pakyla.

Kaip ir Expt. 3 (i). Čia bulvių audinys veikia kaip pusiau pralaidi membrana.

N.B. Bulvių osmoskopas gali būti dedamas į izotoninius, hipotoninius ir hipertoninius tirpalus ir gali būti stebimi atitinkami skysčio lygio pokyčiai osmoskope.

3 eksperimentas

Plazmolizės demonstravimas ir izotoninės koncentracijos nustatymas. „Cell Sap“:

Šiam eksperimentui tinkamas epidermio lupimas nuo Rhoeo arba Tradescantia lapų apatinio paviršiaus, nes ląstelių protoplazma yra aiškiai matoma dėl antocianino pigmento. Šiame eksperimente taip pat gali būti naudojami spirogyra siūlai.

Iš 1 M tirpalo ruošiami 0,15, 0,20, 0,25, 0,30, 0,35 ir 0,40 M sacharozės tirpalai. Po 2 ml supilama į atskiras laikrodžių stiklines ir į kiekvieną tirpalą panardinami po keletą lupų.

Maždaug po 40-50 minučių iš kiekvieno tirpalo išimamas vienas lupimas, įdedamas į tą patį tirpalą ir tiriamas mikroskopu, siekiant ištirti plazmolizuojamų ląstelių skaičių regėjimo lauke.

Nustatomos dvi koncentracijos: viena, kurioje plazmolizė ką tik prasidėjo (t. y. šiek tiek stipresnė už ląstelių sultis), ir kita mažesnė koncentracija, kuri tiesiog nesugeba plazmolizuoti ląstelių.

Dviejų koncentracijų vidurkis suteikia maždaug lygiavertę ląstelių sulčių koncentraciją. Skirtinguose moliniuose tirpaluose plazmolizės mastas (tiek protoplazmos susitraukimas, tiek plazmolizuojamų ląstelių skaičius) taip pat skiriasi.

Ląstelių plazmolizė nevyksta moliniuose sacharozės tirpaluose, kurie yra hipotoniški ir izotoniški ląstelių sultims. Plazmolizė vyksta tik esant hipertoniniams tirpalams. Pradinė plazmolizė vyksta esant koncentracijai, kuri yra šiek tiek didesnė už izotoninę koncentraciją.

N.B. Neįmanoma nustatyti tikslios koncentracijos, kuriai esant prasideda prasidedanti plazmolizė (turguro slėgis lygus nuliui). Taigi pirmiau minėtų koncentracijų vidurkis laikomas izotonine koncentracija. Atskirų ląstelių atveju šis izotoninės koncentracijos nustatymo metodas. turėtų būti priimtas.

Integruoto augalo audinio atveju izotoninę koncentraciją galima nustatyti imant dviejų cukraus tirpalo koncentracijų vidurkį, kai plazmolizė ką tik prasidėjo ir kur plazmolizuojasi centų procentai ląstelių. Šią koncentraciją galima tiesiogiai nustatyti pagal kreivę (plazmolizuojamų ląstelių procentas / cukraus tirpalų koncentracija), kai koncentracija yra izotoninė, kai plazmolizuojasi 50 % ląstelės (4 pav.).

Kai plazmolizuotos ląstelės dedamos į gryną vandenį, vyksta deplazmolizė, ty protoplazma atgauna pradinę formą. Jei cukraus tirpalo koncentracija yra per stipri, nevyksta jokia deplazmolizė, rodanti protoplazmos mirtį.

Šį eksperimentą galima atlikti su spalvotais žiedlapiais, siūliniais dumbliais, tokiais kaip Spirogyra ir kt. Protoplazmos susitraukimo takas yra augalų rūšis.

4 eksperimentas

Integruotų augalų audinių osmosinio slėgio nustatymas:

Šiam eksperimentui gali būti naudojami apatiniai Rhoeo, Tradescantia arba gijinių dumblių, tokių kaip Spirogyra, epiliniai ir plonieji pilingai. Izotoninė koncentracija gali būti nustatyta, kaip nurodyta Expt. 3 (ii).

Ląstelių osmosinis slėgis apskaičiuojamas pagal vieną iš šių formulių:

Taip nustatytas osmosinis slėgis suteikia apytikslę vertę, nes tikslios ląstelių sulčių koncentracijos negalima nustatyti naudojant plazmolitinį metodą dėl kelių priežasčių.

Kai kurie svarbūs klaidų šaltiniai yra šie:

a ) Normalioms ir paprastoms ląstelėms faktinė izotoninė konc. ląstelių kiekį galima gauti tik koreguojant ląstelių tūrio pokyčius, susijusius su osmosinės koncentracijos pokyčiais. (žr. N. B.).

b) Protoplazmos prilipimas prie ląstelės sienelės tam tikro tipo ląstelėse gali sukelti per dideles osmosinio slėgio vertes. Norint gauti tikslų osmosinį slėgį, apskaičiuotas slėgis turi būti padaugintas iš normalaus tūrio ir minimalaus ląstelės tūrio santykio, t.y., plazmolizės stadijoje (žr. N.B.).

c) Tiksliai nustatyti prasidedančią plazmolizę sunku, nes negalima aiškiai pastebėti protoplazmos atsiskyrimo nuo jos sienelės pradžios.

(d) Cukraus tirpalai gali pakeisti ląstelės sienelės pralaidumą ir sukelti didelių klaidų.

(e) Ląstelių sienelė gali būti nepralaidi plazmolizuojantiems išoriniams tirpalams ir skysčiams ir gali būti susisukusi.

f) Nenormalios protoplazmos sąlygos gali atsirasti dėl mechaninio smūgio, kurį sukelia audinių pjovimas arba izoliacija.

g) nepažeistas ląsteles gali neigiamai paveikti sultys, išsiskiriančios iš perpjautų ląstelių.

h) Dėl elastingos ląstelės sienelės gali būti gauti netikslūs rezultatai.

N.B. Garso korekcija atliekama taip:

C = konc. normalios būklės,

Ci = konc. kur plazmolizė ką tik prasidėjo,

V = tūris normaliomis sąlygomis (integruotos ląstelės),

Vi = tūris esant konc. kur plazmolizė ką tik prasidėjo

Kadangi tūrio išmatuoti neįmanoma dėl netaisyklingos ląstelių formos, galima atsižvelgti į vidutinį plotą (ilgis × plotis).

Osmosinis slėgis taip pat gali būti nustatomas krioskopiniu metodu.

Galima naudoti šią lygtį, susijusią su užšalimo taško sumažėjimu ir osmosiniu slėgiu:

Kur A yra užšalimo taško depresija.

A nustatomas taip:

1 molinis neelektrolito tirpalas užšąla -1,86°C temperatūroje, o jo teorinis O.P. yra 22,4 atmosferos. Norint iš tikrųjų atgrasyti ir sušvelninti ląstelių sulčių A, pirmiausia ląstelių sultys turi būti išgaunamos sunaikinant ląsteles užšaldant.

Indas, kuriame yra eksperimentinis audinys, yra apsuptas ledo ir paprastosios druskos mišiniu. Tada užšaldytam audiniui leidžiama ištirpti. Dabar sulą galima lengvai ištraukti rankiniu paspaudimu. Galima nustatyti maceruotos medžiagos užšalimo temperatūrą.

Medžiagos molekulinė masė gali būti apskaičiuojama pagal šią formulę, kai žinomas tirpalo stiprumas procentais arba gm/litre, osmosinis slėgis ir kambario temperatūra.

R = universali dujų konstanta (0,082),

T = 273 + laboratorinė temperatūra, P osmosinis slėgis,

M = medžiagos molekulinė masė.

Šiam osmosinio slėgio nustatymo eksperimentui taip pat gali būti paimtas integruotas audinys, pavyzdžiui, bulvių gumbas. Čia izotoninę koncentraciją galima gauti laikant cukraus koncentraciją izotonine, kai masė nekeičiama.

5 eksperimentas

Augalų ląstelių vidutinio siurbimo slėgio arba difuzinio slėgio trūkumo nustatymas:

Iš 1 M pradinio sacharozės tirpalo paruošiama po 20 ml 0,5, 0-20, 0-25, 0-30, 0,35 ir 0,40 molinių koncentracijų. Visi suberti periferiniai šviežių bulvių gumbų arba burokėlių šaknų sluoksniai pašalinami ir supjaustomi 1 cm x 2 cm gabalėliais kamštienos grąžtu ir skalpeliu.

Kiekvienas gabalas nuplaunamas distiliuotu vandeniu, gerai nusausinamas, pasveriamas (pradinis svoris) ir supilamas į kiekvieną suskirstytą sacharozės tirpalą. Tada jie paliekami maždaug valandą. Pasibaigus nustatytam laikui, gabalai išimami, kruopščiai nusausinami ir dar kartą pasveriami (galutinis svoris).

Aukščiau aprašytu būdu osmosinė koncentracija visiškai sutirštėjusio bulvių gumbų audinyje (padidinta, prieš pusvalandį palaikius audinį vandenyje) ir iš dalies dehidratuoto audinio (iš dalies dehidratuota pusvalandį laikant audinį atvirame ore) osmosinė koncentracija. ) nustatomi atskirai.

Skirtumas tarp osmosinio slėgio, gauto esant dehidratuotiems ir normaliems audiniams, ir tarp normalių ir sutirštėjusių audinių duoda atitinkamai dehidratuotų ir normalių audinių D.P.D.

Kiekvienai sacharozės tirpalo koncentracijai nustatytas procentinis audinio i masės padidėjimas arba sumažėjimas. Rezultatai nubraižyti ant milimetrinio popieriaus, cukraus koncentraciją imant kaip abscises ir procentinį svorio pokytį kaip ordinatę. Sacharozės koncentracija, atitinkanti nekeičiamą svorį, nustatyta iš grafiko.

Ši vertė nurodo ląstelių sulčių osmosinę koncentraciją, kai osmosinis slėgis yra lygus įsiurbimo slėgiui (D.P.D.), o turgo slėgis lygus nuliui. D.P.D. apskaičiuojamas taikant osmosinio slėgio formulę, pateiktą Expt. 3 (iv). Taip pat gali būti atliekamos reikiamos temperatūros ir tūrio pataisos.

D.P.D. čia gaunamas netiesiogiai, nes D.P.D. tirpalo yra lygus jo osmosiniam slėgiui esant izotoninei ląstelių sulčių koncentracijai, t.y., pusiausvyros taške.

Ši vertė gaunama iš molinio stiprumo sacharozės tirpalo, su kuriuo ląstelės arba audiniai pasiekia pusiausvyrą prasidėjusios plazmolizės metu ir kai ląstelių tūris yra santykinis minimumas dėl vandens eksosmoso sukelto turgoro slėgio pašalinimo.

Siurbimo slėgio vertės gali būti identiškos osmosinio slėgio vertėms tik tuo atveju, jei ląstelės iš pradžių yra pradinėje plazmos ir shimolizės stadijoje.

6 eksperimentas

Turgourinio augalo audinio slėgio nustatymas:

Tinkamo augalo audinio izotoninė koncentracija nustatoma pagal Expt. 3 (iii) arba 3 (v), atsižvelgiant į tai, kas patogu. Pirmiausia nustatomas audinio osmosinis slėgis (kuris čia lygus siurbimo slėgiui ir slėgiui arba D.P.D., kai turgoro slėgis lygus nuliui). Tai laikoma ląstelių sulčių osmosiniu slėgiu (P) toje stadijoje.

Tada audinys laikomas gryname vandenyje, kad padidėtų turgo slėgis. Po 10 minučių audinys išimamas ir panašiai nustatomas osmosinis slėgis (siurbimo slėgis arba D.P.D., turgoras lygus nuliui). Procesas kartojamas tol, kol siurbimo slėgis pasiekia pastovią vertę ir užregistruojami atitinkami siurbimo slėgiai.

Turgo slėgis gaunamas pagal formulę,

T = P – S, kur P = ląstelių sulčių osmosinis slėgis (laikomas pastoviu), S = siurbimo slėgis skirtingais laiko intervalais ir T = turgorinis slėgis tam tikru periodiniu laiku. Taigi skirtumas tarp pradinio osmosinio slėgio (P) ir to, kuris nustatomas kas 10 minučių intervalu (S), parodo turgoro slėgio padidėjimo greitį (T).

Kai tirpalas yra įterptas į pusiau pralaidžią membraną, panardintą į vandenį, vandens molekulės judės per membraną, nes vandens molekulių difuzinis slėgis vandenyje yra didesnis nei tirpalo membranos viduje.

Taigi, vandens patekimas į vidų ląstelėje sukuria turgorinį slėgį. Didėjant turgoro slėgiui, siurbimo slėgis (D.P.D.) mažėja. Šiame eksperimente pradinis ląstelės osmosinis slėgis buvo laikomas didžiausiu jos osmosiniu slėgiu, o esant izotoninei išorinio tirpalo koncentracijai, tai yra lygi D.P.D. ląstelės (turgur lygus nuliui).

Vėl panardinus į gryną vandenį, dėl endosmoso padidėja turgoro slėgis ir dėl to krenta siurbimo slėgis. Osmosinis slėgis, nustatytas šiame etape naudojant izotoninę koncentraciją (kuri turi būti mažesnė už pradinę vertę), suteikia siurbimo slėgį.

Ši vertė, atėmusi iš pradinės osmosinio slėgio vertės, suteikia turgorinį slėgį esant tam tikram audinio siurbimo slėgiui. Pasiekus maksimalų kameros turgorinį slėgį, tolesnis siurbimo slėgio pasikeitimas nevyksta.


Paprasti augalų mokslo eksperimentai vaikams

Ko reikia augalams augti? Kodėl neparengus mokslinio eksperimento, kad atsakytumėte į klausimą.

Ar augalas gali išgyventi su apelsinų sultimis, o ne vandeniu? Pasirinkite du tos pačios rūšies augalus, du indus, vienas užpildytas vandeniu, kitas - apelsinų sultimis. Į kiekvieną konteinerį įdėkite po vieną augalą, stebėkite ir užfiksuokite augimo skirtumą.

Čia yra dar vienas augalų augimo eksperimentas, tačiau šiame įraše išsamiau paaiškinta, kaip parašyti hipotezę ir kaip jie registravo augalų augimo duomenis.

Norėdami šiek tiek įsigilinti į temą, galite paklausti kiek laiko skirtingi augalai gali išgyventi be saulės šviesos ir vandens? Suplanuokite eksperimentą, kuriame skirtingų dydžių augalai įdedami į juodą kambarį ir jų nelaistykite. Tačiau kasdien patikrinkite jų būseną ir įrašykite duomenis. Ar matote skirtumą tarp skirtingų dydžių augalų?

Kaip augalai augs dirbtinėje šviesoje palyginti su gamtos šviesa? Ar pavyks eksperimentą suplanuoti pats?

Tai paprastas eksperimentas lyginant skirtingų augalų augimą. Tai galite lengvai padaryti savo virtuvėje.

Kaip augalai sugeria vandenį? Tai lengvas, bet įdomus eksperimentas, kurį mėgsta maži vaikai.

Nors paskutinis eksperimentas parodo, kaip vanduo keliauja per lapus, šis parodo kaip vanduo keliauja per gėles.

Po paskutinių dviejų eksperimentų jums reikės šio paaiškinti, kodėl augalams reikia vandens.

Kaip greitai auga augalas? Tame įraše taip pat rasite nemokamą spausdinamą įrašymo lapą.

Sužinoję, ko reikia augalams augti, pabandykite auginti saldžiąsias bulves savo mokslo stale arba virtuvės mokslo laboratorijoje. Vaikai norės pamatyti pokyčius laikui bėgant ir stebėti daigus bei šaknis.

Vyresniems vaikams galite sukurti 3D augalo ląstelęir aptarti skirtumą tarp augalų ir gyvūnų ląstelių.

Tikiuosi, kad jums patiks šie moksliniai eksperimentai. Užsiimant mokslu namuose – tai ne tik pramoga, bet ir ugdyti vaiko susidomėjimą mokslu bei padėti ugdyti mokslinio mąstymo įgūdžius. Raginu jus sekti mokslo žingsniai dirbdami su vaikais šioje įdomioje veikloje. Aš aprašiau veiksmus ir sukūriau šį mokslo eksperimento įrašų lapą. Labai rekomenduoju jį naudoti net ir mažiems vaikams. Jie gali piešti paveikslėlius, jei nemoka rašyti. Svarbus yra procesas, pradedant nuo klausimų ir hipotezių.

Ieškote paprastesnės ir linksmesnės mokslinės veiklos, skirtos vaikams sužinoti apie augalus? Patikrinkite 9 Sėklų mokslo eksperimentai vaikams. Išėję į lauką tokius rasite 10 augalų identifikavimo programų naudinga. Jums tikrai patiks šie 45 moksliniai eksperimentai, skirti vaikams sužinoti apie augalų gyvavimo ciklą.


4 laboratorija Augaliniai pigmentai

Įvadas:
Šio laboratorinio eksperimento tikslas buvo atskirti augalų pigmentus naudojant popieriaus chromatografiją ir išmatuoti fotosintezės greitį izoliuotuose chloroplastuose. Dėl kapiliarinio veikimo tirpiklis juda popieriumi aukštyn, todėl pigmentai tampa matomi tam tikrais atstumais.

Ant popieriaus matomos medžiagos vadinamos pigmentais. Chlorofilas a yra pagrindinis pigmentas, kuris sudaro apie 75% augalų pigmentacijos. Chlorofilas b sudaro apie 25% pigmentacijos. O karotenai ir ksantofilai yra pagalbiniai pigmentai, kurie sudaro likusią pigmentacijos dalį. Karotinas yra labiausiai tirpus pigmentas, todėl tirpiklis jį nuneš toliausiai. Popierius parodys špinatų lapuose esančių pigmentų spektrą. Naudojant formulę Rf galima nustatyti ryšį tarp atstumo, kurį nukeliavo tirpiklis, ir pigmento nukeliauto atstumo.


Rf = atstumas l2igment migrated (mm) atstumas tirpiklio frontas migruotas

Šviesa yra spinduliuotės arba energijos bangų kontinuumo dalis. Regimosios šviesos energija naudojama fotosintezės procese. Šviesa sugeriama lapų pigmentuose, kiekvienos fotosistemos elektronai padidinami iki aukštesnio energijos lygio, kad susidarytų ATP ir sumažintų NADP ir NADPH. Tada ATP naudojamas anglies fiksavimui. Tai yra CO2 įtraukimas į organines molekules.
Šviesos pralaidumui chloroplastuose matuoti bus naudojamas spektrofotometras. Šviesos pralaidumo matavimo priežastis yra apskaičiuoti fotosintezės greitį chloroplastuose. Vietoj NADP bus naudojamas tirpalas, vadinamas DPIP, kad būtų galima įvertinti chloroplastų tirpalų spalvos pokyčius. Šis metodas žinomas kaip dažų mažinimas ir tikrina hipotezę, kad šviesos reakcijoms įvykti reikalinga šviesa ir chloroplastai.

Hipotezė:
Šiame eksperimente iškelta hipotezė, kad kiuvetės su virtais chloroplastais ir tamsoje laikomos kiuvetės, kurioje yra nevirintų chloroplastų, šviesos pralaidumas pasikeis labai nedaug, o kiuvetės, kurioje yra nevirintų chloroplastų, kurios buvo veikiamos šviesa, pralaidumas procentas bus vis didesnis. laikui bėgant.

Medžiagos ir metodai:
4A laboratorija:
Šiame laboratorijos skyriuje naudotos šios medžiagos: filtravimo popierius, stiklinis buteliukas, nedidelis tirpiklio kiekis, ketvirtadalis ir špinatų lapai. Pirmas žingsnis buvo iškirpti tašką viename filtravimo popieriaus gale ir nubrėžti pieštuko liniją 1,5 cm atstumu nuo šio taško galo. Tada ant popieriaus juostelės buvo uždėtas špinatų lapas ir apverstas ketvirtadaliu ant pieštuko linijos. This gives a green line across the paper, which contains the pigments of the leave. Then the strip of paper was placed into the vial with the point down in the bottom. When the pigment reached the point 1 cm from the top of the vial then it was removed. The solvent front was then quickly marked with a pencil and then each pigment front was marked as well. From the distance the pigment traveled and the distance the solvent traveled the Rf value was calculated.

Lab 4B:
The materials used in this lab were: a spectrophotometer, 4 cuvettes, phosphate buffer, distilled water, boiled chloroplasts, unboiled chloroplasts, and DPIP .First the cuvettes were labeled 1-4 and cleaned with lens paper because even the oil from your hands can affect the transmittance of light through the cuvette. Cuvette 2 was then wrapped with foil to keep the contents in the dark. Next 1 ml of phosphate buffer was added to all four cuvettes, 4ml of distilled water was added to cuvette 1, 3rn1 of distilled water was added to cuvettes 2,3, and 4, and Iml of DPIP was added to cuvettes 2,3, and 4. Then 3 drops of unboiled chloroplasts were added to cuvette 1, it was covered with parafilm, placed into the spectrophotometer, and set to 100% transmittance. This cuvette was used to recalibrate between readings as well. Three drops of unboiled chloroplasts were placed in cuvette 2 and 3, and three drops of boiled chloroplasts were placed in cuvette 4. The cuvettes were then covered with parafilm. Each was placed in the spectrophotometer and the % transmittance of each, every five minutes for 15 minutes, was recorded.


Food waste – bruising and browning

All we see is a piece of bruised fruit on the supermarket shelf – but what are the mechanisms behind bruising and browning, and how does it protect damaged plants against both bacterial and fungal disease?

Making sure that food reaches the consumer in good condition is both big business and an environmental issue.

Catechol oxidase activity may be of huge economic importance. It has been estimated that half the world’s fruit and vegetable crop is lost due to post-harvest browning reactions due to the enzyme.

Every piece of food has an environmental impact, and the fertilisers and energy used to produce it are wasted if it is thrown away uneaten. Uneaten food is also a financial loss to the producer or retailer.

This project starter contains ideas for investigating the enzyme activity in plant tissues, suitable for Advanced Higher Biology investigations and EPQs.

Background information

Catechol oxidase (also called polyphenoloxidase) is an enzyme found in a wide variety of plants. It is responsible for the darkening observed when many fruits or vegetables are cut or bruised.

Catechol oxidase catalyses the reaction of catechol, which is colourless, to the yellow compound, ortho-quinone (o-quinone). o-quinone then reacts with oxygen in the air to form brown-black compounds called melanins.

Catechol is present in small quantities in the vacuoles of cells of many plant tissues. Catechol oxidase is present in the cell cytoplasm.

If the plant tissues are damaged, the catechol is released and the enzyme converts the catechol to ortho-quinone, which is a natural antiseptic.

Catechol oxidase therefore has a role in plant defence mechanisms, helping to protect damaged plants against both bacterial and fungal disease.

It has been suggested that the quantity of catechol oxidase produced by a plant may be related to its susceptibility to fungal infection.

Catechol oxidase activity is also of economic importance. It has been estimated that half the world’s fruit and vegetable crop is lost due to post-harvest browning reactions due to the enzyme.

Papildoma literatūra
    . WRAP is a UK charity that focuses on the sustainable use of resources. They have a particular focus on understanding the causes of food waste and hence reducing it. . This article from Discover Magazine describes a new transgenic variety of apple that ‘turns off’ the gene that controls the browning process seen when an apple is cut and exposed to the air (Discover Magazine, February 18, 2015). . Researchers from Harper Adams University are identifying the genes that make certain varieties of lettuce more susceptible to browning than others. They hope this will enable them to breed new varieties that will take longer to turn brown, especially in bagged salad mixes.
  • Writtle College has a well-respected centre for Post-Harvest Technology. Their research gives an insight into the key issues currently being addressed by UK businesses and research.
Practical Investigations – step-by-step protocols

We’ve put together step-by-step protocols for you to use for a practical investigation on this topic.


Moonflower Pests

These plant pests suck the juices from moonflowers, leaving a sticky residue that draws ants. If you see these green, red, black or orangish insects, wash them off with a strong spray of water from your garden hose or spray with an insecticidal soap. Introducing natural predators that eat aphids into your garden, such as lady beetles and wasps, can also help.

Known for their metallic green bodies and copperish wing covers, Japanese beetles destroy plants by skeletonizing leaves and buds. Wear garden gloves to pick off these pests and drop them into a bucket of soapy water.

Tomato and tobacco hornworms, the larvae of sphinx or hawk moths, are large enough to see easily. These pests have soft, green bodies with white stripes. Wear gloves to pick them and step on them or drop them into a bucket of soapy water. If you see hornworms with white, rice-sized objects on their backs, leave them alone. They're under attack by the larvae of a parasitic wasp and will die. Nenaudokite Bacillus thuringiensis kurstaki (Btk) on your plants. It's a biological control that kills the larvae of moths and butterflies, but it can kill desirable butterflies.

Leafminers sometimes bore under the surface of moonflower leaves, leaving irregular lines. You may spot them in the larval stage when they look like yellow maggots, or in the adult stage when they look like little yellow and black flies. While they don't usually cause moonflower plants to die, they can ruin their appearance. Cut off infected foliage and discard it.


Žiūrėti video įrašą: apie augalus (Gruodis 2022).