We are searching data for your request:
Upon completion, a link will appear to access the found materials.
Šiuo metu studijuoju arklio dėlę ir norėčiau sužinoti, ar ji jau pilnai išaugusi, ar ne. Kai skaitau apie skirtingas anelidų rūšis, dažnai nurodomas maksimalus ilgis, todėl įdomu, ar yra koks nors standartinis šių elastingų gyvūnų matavimo būdas?
Pavyzdžiui, mano dėlė svyruoja nuo 2 iki 10 cm, bet dažnai atrodo, kad nejudant nori išsitiesti iki maždaug 6 cm.
(Galbūt turėčiau pakeisti šį klausimą, kad jis būtų tik apie dėles, bet man taip pat įdomu apie sliekus ir tikriausiai kitus minkštus ir sunkius kirminus...)
Dėlės:
Pasak Taube (1966)$^1$:
Amerikietiškų dėlių suaugusiųjų dydis svyruoja nuo maždaug 1/4 colio iki 12 colių sudaryta sutartis ilgio.
Kadangi po valgio dėlės gali išsipūsti iki „įprasto“ dydžio daugiau nei 10 kartų (ir jų ilgis gali pasikeisti iki 300 proc.), atrodo, kad matuojant dėlės bet ką, išskyrus jų susitraukimo būseną, išmatavimai būtų labai įvairūs. . Todėl atrodo, kad tik sutrauktas dydis būtų tikrai naudingas.
Tačiau žr. Klemm (1982)$^2$ (arba Klemm, 1995 m $^3$) komentarams apie pageidaujamą išsaugojimą identifikavimo tikslais:
[Dės] turi minkštą, labai susitraukiantį kūną. Todėl gyvas dėles numetus į konservantus, tokius kaip 70% alkoholis (etanolis)... jos stipriai susitraukia, o kartais tokie bruožai kaip akys, bendros kūno formos, lytinių organų poros išsikraipo ir pasunkėja ne specialistui, o kartais net ir. ekspertas atpažins. Kai dėlės prieš fiksavimą tinkamai anestezuojamos, paprastai raumenys susitraukia mažiau. kūno forma išlieka vienodesnė, anatominės struktūros mažiau kinta... Išsaugota dėlė turi būti tiesi, vidutiniškai pratęstas ir neiškraipytas.
- Tačiau Klemmas savo rakte nenaudoja kūno ilgio kaip identifikavimo požymio, todėl atrodo, kad jo nurodymai labiau rūpinasi kitų anatominių ypatybių išsaugojimu (ne siekiant užtikrinti tikslius ilgio matavimus). Jis nurodo „vidutinį rūšių dydį“, tačiau pažymi, kad „susitraukimas apdorojimo metu“ gali lemti išmatuoto ilgio pokyčius.
Kiti anelidai:
Įdomu tai, kad naturewatch.ca pateikia šias sliekų matavimo instrukcijas:
1. Leiskite kirminui laisvai išsitiesti, tarsi jis šliaužiotų.
2.Išmatuokite didžiausią atstumą, kurį sliekas įveikia visiškai išsitiesęs.
Panašiai, daktaro laipsnis. Cynthia M. Hale disertacija (2004)$^4$ išmatuoti sliekai juos konservuojant ir tada
matuojant ilgiausią ištiesinto asmens ašį.
Atimti:
Atrodo, kad kiekvienos rūšies kūno ilgio diapazonai yra beveik visada numatyti. Nors tai nėra neįprasta jokiems taksonams, daugelyje šaltinių (įskaitant cituotus) minima, kad dėl konservavimo metodų ir (arba) kūno orientacijos kintamumo gali skirtis užregistruotas ilgis (kaip ir amžius, gyvybingumas, žarnyno kiekis, drėgmės kiekis ir kt.). Visų pirma Klemmas siūlo naudoti daugybę muziejaus egzempliorių, kad padarytų išvadas apie rūšis dėl šių kintamumo problemų.
Dėl šių neatitikimų / neatitikimų, manau, jums geriausia nurodyti metodologijos šaltinį (pvz., Taube 1966) ir aiškiai nurodydami savo matavimo metodus.
Apšvietimo šaltiniai:
[1] Taube, Clarence M. 1966. Dėlės. Žuvininkystės tyrimų instituto ataskaita Nr. 1713. http://quod.lib.umich.edu/f/fishery/AAG2862.1713.001?rgn=main;view=toc.
[2] Klemm, Donald J. 1982. Šiaurės Amerikos dėlės (Annelida: Hirudinea). EPA-600/3-82-025. Sinsinatis, OH.
[3] Klemm, Donald J. 1995. Floridos ir kitų pietinių valstijų gėlavandenių dėlių (Annelida: Hirudinea) identifikavimo vadovas. Floridos aplinkos apsaugos departamentas. Talahasis, FL. http://publicfiles.dep.state.fl.us/dear/labs/biology/biokeys/leeches.pdf
[4] Hale, Cynthia M. 2004 Egzotinių įsibrovėlių ekologinės pasekmės: sąveika, apimanti Europos sliekus ir vietines augalų bendrijas kietmedžio miškuose. daktaro disertacija. Minesotos universitetas.
Kraujo kirmėlės yra kreminės rausvos spalvos, nes jų blyški oda leidžia jiems prasiskverbti raudoniems kūno skysčiams, kuriuose yra hemoglobino. Tai yra pavadinimo „kraujo kirmėlė“ kilmė. Kraujo kirmėlių „galvoje“ yra keturios mažos antenos ir mažos mėsingos iškyšos, vadinamos parapodijomis, einančias per jų kūną. [1] [2] Kraujo kirmėlės gali užaugti iki 35 centimetrų (14 colių) ilgio.
Kraujo kirmėlės yra mėsėdžiai. Jie maitinasi ištiesdami didelį proboscią, turintį keturis tuščiavidurius žandikaulius. Žandikauliai yra sujungti su liaukomis, tiekiančiomis nuodus, kuriais jie nužudo grobį, o jų įkandimas yra skausmingas net žmogui. Juos grobia kiti kirminai, dugnu mintančios žuvys, vėžiagyviai ir kirai.
Dauginimasis vyksta vidurvasarį, kai šiltesnė vandens temperatūra ir mėnulio ciklas, be kitų veiksnių, skatina lytiškai subrendusius kirminus transformuoti į nemaitinimo stadiją, vadinamą epitoku. Padidėjus parapodijai, jie plaukia į vandens paviršių, kur abiejų lyčių atstovai išskiria gametas, o tada miršta.
Pirmoji daugelio kraujo kirmėlių formų stadija yra zooplanktoninė stadija, po kurios seka bentoso stadija, kai vystosi pažįstamos segmentuotos raudonos lervos, apsaugotos dugno dumbluose pagamintais šilko vamzdeliais. Šios lervos iš mažyčių blyškiai nepermatomų kirmėlių virsta didesnėmis raudonomis lervomis, kurių ilgis yra nuo 3 iki 10 centimetrų arba ilgesnis per tokį trumpą laikotarpį kaip 2–3 savaites optimaliomis sąlygomis. [3]
Šie gyvūnai išskirtiniai tuo, kad juose yra daug vario, neapsinuodiję. Jų žandikauliai yra neįprastai stiprūs, nes juose taip pat yra metalo vario pagrindu pagaminto chlorido biomineralo, žinomo kaip atakamitas [4], kristalinės formos. [5] Teigiama, kad šis varis naudojamas kaip nuodingo įkandimo katalizatorius.
Glicera yra Glyceridae šeimos tipo gentis. Jame yra šios rūšys: [6]
- Glycera abranchiata
- Glycera alba
- Glicera amadaiba
- Glycera amboinensis
- Glycera americana
- Glycera asymmetrica
- Glycera baltica
- Glycera bassensis
- Glycera benguellana
- Glycera benhami
- Glycera branchiopoda
- Glycera brevicirris
- Glycera calbuconensis
- Glycera capitata
- Glycera carnea
- Glycera celtica
- Glycera chirori
- Glycera cinnamomea
- Glycera convoluta
- Glycera dayi
- Glycera decipiens
- Glycera dentribranchia
- Glycera derbyensis
- Glycera dibranchiata
- Glycera dubia
- Glycera edwardsi
- Glycera ehlersi
- Glycera embranchiata
- Gliceros epipolozė
- Glycera fundicola
- Glycera fusiformis
- Glycera gigantea
- Glycera gilbertae
- Glycera glaucopsammensis
- Glycera guatemalensis
- Glycera guinensis
- Glycera hasidatensis
- Glycera heteropoda
- Glycera incerta
- Glycera kerguelensis
- Glycera knoxi
- Glycera lamelliformis
- Glycera lamellipodia
- Glycera lancadivae
- Glycera lapidum
- Glycera longipinnis
- Glycera longissima
- Glycera macintoshi
- Glycera madagascariensis
- Glycera manorae
- Glycera martensii
- Glycera mauritiana
- Glycera micrognatha
- Gliceros mimikos
- Glycera minor
- Glicera minutė
- Glicera nana
- Glycera natalensis
- Glycera nicobarica
- Glycera nigripes
- Glycera onomichiensis
- Glycera orientalis
- Glycera oxycephala
- Glycera pacifica
- Glycera papillosa
- Glycera pilicae
- Gliceros daugiakampis
- Glycera posterobranchia
- Glycera prashadi
- Glycera profundi
- Glicera prosobranchia
- Glycera pseudorobusta
- Glicera robusta
- Glycera rouxi
- Glycera russa
- Glycera rutilans
- Glycera spadix
- Glycera sphyrabrancha
- Glycera subaenea
- Glycera taprobanensis
- Glycera taurica
- Glycera tenuis
- Glycera tesselata
- Glycera unicornis
Glicera kirminai parduodami reikmenų parduotuvėse kaip masalas žvejybai sūriame vandenyje. [7]
- ^Chien PK, Rice MA (1985). Išoriškai tiekiamų aminorūgščių autoradiografinis lokalizavimas po to, kai juos pasisavina daugiašakis, Glycera dibranchiata Ehlersas“. Wasmann biologijos žurnalas. 43: 60–71. ISSN0043-0927. OCLC6322423.
- ^
- Qafaiti M, Stephens GC (1988). Amino rūgščių pasiskirstymas vidiniuose audiniuose po epidermio pasisavinimo anelide Glycera dibranchiata“ (PDF) . Eksperimentinės biologijos žurnalas. 136 (1): 177–191.
- ^
- "Kraujo kirmėlė: naudojimas ir pritaikymas kaip žvejybos masalas". Suarchyvuota nuo originalo 2013-03-15. Žiūrėta 2012-12-03.
- ^
- Lichtenegger HC, Schöberl T, Bartl MH, Waite H, Stucky GD (2002 m. spalio mėn.). „Aukštas atsparumas dilimui su menka mineralizacija: vario biomineralas sliekų žandikauliuose“. Mokslas. 298 (5592): 389–92. doi:10.1126/science.1075433. PMID12376695. S2CID14001250.
- ^
- Lichtenegger HC, Schöberl T, Ruokolainen JT ir kt. (2003 m. rugpjūtis). „Cinkas ir mechaninis meistriškumas jūrinės kirmėlės Nereis nasruose“. Proc. Natl. Akad. Sci. JAV. 100 (16): 9144–9. doi:10.1073/pnas.1632658100. PMC170886 . PMID12886017.
- ^ Fauchald, K. Bellan, G. (2009). Glycera Savigny, 1818. In: Fauchald, K. (Red) (2009). World Polychaeta duomenų bazė. Prieiga per Pasaulinį jūrų rūšių registrą adresu http://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&id=129296, 2009-03-12.
- ^
- WHITTLE'as, PATRIKAS (2017-04-27). „Masinamas masalas: brangių kirminų mažėjimas kelia grėsmę gyvenimo būdui“. JAV naujienos. Suarchyvuota nuo originalo 2018-04-21.
Alergijos, astmos ir klinikinės imunologijos (AACI) svetainėje atliktas tyrimas „Alergenų žvejyba: kraujo kirmėlių sukelta astma“ [1]
Turinys
Yra daugiau nei 22 000 gyvų anelidų rūšių [5] [6], kurių dydis svyruoja nuo mikroskopinių iki Australijos milžiniškų Gippsland sliekų ir Amynthas mekongianus (Cognetti, 1922), kurie abu gali užaugti iki 3 metrų (9,8 pėdų) ilgio. [6] [7] [8] Nors tyrimai nuo 1997 m. radikaliai pakeitė mokslininkų požiūrį į evoliucinį anelidų šeimos medį, [9] [10] daugumoje vadovėlių naudojamas tradicinis klasifikavimas į šiuos pogrupius: [7] [11]
- (apie 12 000 rūšių [5] ). Kaip rodo jų pavadinimas, viename segmente jie turi kelis chetae („plaukelius“). Daugiašakės turi parapodijas, kurios veikia kaip galūnės, ir kaklo organus, kurie, kaip manoma, yra chemosensoriai. [7] Dauguma jų yra jūrų gyvūnai, nors kelios rūšys gyvena gėlame vandenyje ir dar mažiau sausumoje. [12]
- (apie 10 000 rūšių [6] ). Jų viename segmente yra mažai arba visai nėra cheta, taip pat nėra kaklo organų ar parapodijų. Tačiau jų kūnas turi unikalų dauginimosi organą – žiedo formos kliteliumą („paketinį balną“), kuris gamina kokoną, kuris saugo ir maitina apvaisintus kiaušinėlius, kol jie išsirita [11][13] arba, moniligastridžių atveju, trynius. kurie aprūpina embrionus mityba. [6] Klitelitai skirstomi į: [7]
- Pogonophora / Siboglinidae pirmą kartą buvo aptikti 1914 m., o dėl atpažįstamo žarnyno nebuvimo buvo sunku juos klasifikuoti. Jie buvo klasifikuojami kaip atskiras prieglobstis, Pogonophora, arba kaip dvi filos, Pogonophora ir Vestimentifera. Visai neseniai jie buvo perskirstyti į daugiašakių šeimyną, Siboglinidae. [12][15]
- Echiura turi languotą taksonominę istoriją: XIX amžiuje jie buvo priskirti prie „Gephyrea“ prieglobsčio, kuris dabar yra tuščias, nes jos nariai buvo priskirti kitoms giminėms. kaip savarankiškas prieglobstis, tačiau 1997 m. molekulinės filogenetikos analizė padarė išvadą, kad echiuranai yra anelidai. [5][15][16] gyvena ant krinoidų ir kitų dygiaodžių, daugiausia kaip parazitai. Anksčiau jie buvo laikomi artimais trematodeflat kirmėlių arba tardigradų giminaičiais, tačiau 1998 m. buvo pasiūlyta, kad jie yra daugiasluoksnių kirmėlių pogrupis. [12] Tačiau kita 2002 m. analizė parodė, kad mizostomidai yra glaudžiau susiję su plokščiaisiais kirmėlėmis arba rotiferiais ir akantocefalais. [15] iš pradžių buvo klasifikuojamas kaip anelidai, nepaisant visiško segmentacijos, šerių ir kitų anelidų trūkumo. Sipuncula gentis vėliau buvo susieta su moliuskais, daugiausia dėl vystymosi ir lervų savybių. Filogenetinės analizės, pagrįstos 79 ribosomų baltymais, parodė Sipuncula vietą Annelidoje. [17] Vėlesnė mitochondrijų DNR analizė patvirtino jų glaudų ryšį su Myzostomida ir Annelida (įskaitant echiuranus ir pogonoforanus). [18] Taip pat buvo įrodyta, kad pradinė nervų segmentacija, panaši į anelidų, įvyksta ankstyvoje lervos stadijoje, net jei šių požymių suaugusiems žmonėms nėra. [19]
- Prisidėjo Shannan Muskopf
- Granito miesto mokyklos rajono vidurinės mokyklos biologijos instruktorius
- Gauta iš Biology Corner
- („su keliais plaukeliais“), įskaitant sliekus. Oligochaetai turi lipnią pagalvėlę burnos stoge. [7] Dauguma urvų, kurie minta visiškai arba iš dalies suirusiomis organinėmis medžiagomis. [12] , kurios pavadinimas reiškia „dėvės formos“ ir kurio žinomiausi nariai yra dėlės. [7] Jūrų rūšys dažniausiai yra kraujasiurbiai parazitai, daugiausia ant žuvų, o dauguma gėlavandenių rūšių yra plėšrūnai. [12] Jie turi siurbtukus abiejuose kūno galuose ir naudoja juos judėti kaip sliekų. [14]
Archiannelidos, smulkieji anelidai, gyvenantys erdvėse tarp jūrinių nuosėdų grūdelių, buvo traktuojami kaip atskira klasė dėl savo paprastos kūno struktūros, tačiau dabar laikomi daugiasluoksniais. [11] Kai kurios kitos gyvūnų grupės buvo klasifikuojamos įvairiais būdais, tačiau dabar plačiai laikomos anelidais:
Nė vienas požymis anelidų neišskiria nuo kitų bestuburių genties gyvūnų, tačiau jie turi išskirtinį bruožų derinį. Jų kūnai yra ilgi, su segmentais, kuriuos išoriškai skiria negilūs žiedą primenantys susiaurėjimai, vadinami žiedais, o viduje – pertvaros („pertvaros“) tose pačiose vietose, nors kai kurių rūšių pertvaros yra nepilnos ir kai kuriais atvejais jų nėra. Daugumoje segmentų yra tie patys organų rinkiniai, nors dėl bendro žarnyno, kraujotakos ir nervų sistemos jie yra priklausomi. [7] [11] Jų kūnus dengia odelė (išorinis dangalas), kurioje nėra ląstelių, bet kurią išskiria apatinėje odoje esančios ląstelės, pagaminta iš tvirto, bet lankstaus kolageno [7] ir nelysta [20] – Kita vertus, nariuotakojų odelės yra pagamintos iš standesnio α-chitino [7] [21] ir tirpsta tol, kol nariuotakojų dydis pasiekia visą savo dydį. [22] Dauguma anelidų turi uždaras kraujotakos sistemas, kur kraujas visą savo ratą sudaro kraujagyslėmis. [20]
Annelida [7] | Neseniai susijungė su Annelida [9] | Glaudžiai susijęs | Panašiai atrodantis phyla | |||
---|---|---|---|---|---|---|
Echiura [23] | Sipuncula [24] | Nemertea [25] | Nariuotakojai [26] | Onychophora [27] | ||
Išorinis segmentavimas | Taip | ne | ne | Tik keliose rūšyse | Taip, išskyrus erkes | ne |
Vidaus organų pasikartojimas | Taip | ne | ne | Taip | Primityviomis formomis | Taip |
Septa tarp segmentų | Daugumoje rūšių | ne | ne | ne | ne | ne |
Odelių medžiaga | kolageno | kolageno | kolageno | nė vienas | α-chitinas | α-chitinas |
Molting | Paprastai ne [20], bet kai kurie daugiasluoksniai kūnai lipdo žandikaulius, o dėlės – odą [28] | ne [29] | ne [29] | ne [29] | Taip [22] | Taip |
Kūno ertmė | Coelom, tačiau daugelyje dėlių ir kai kurių mažų daugiasluoksnių jų nėra arba jų nėra [20] | dvi koelomos, pagrindinės ir stuburo srityje | dvi koelomos, pagrindinės ir čiuptuvuose | Coelom tik proboscis | Hemocoel | Hemocoel |
Kraujotakos sistema | Uždaryta daugumoje rūšių | Atviras ištekėjimas, grįžimas per šakotą veną | Atviras | Uždaryta | Atviras | Atviras |
Segmentavimo redagavimas
Didžiąją anelidų kūno dalį sudaro segmentai, kurie yra praktiškai identiški, turintys tuos pačius vidaus organų ir išorinių chaetų rinkinius (graikiškai χαιτη, reiškiantys „plaukai“), o kai kurioms rūšims – priedus. Priekinės ir galinės dalys nėra laikomos tikrais segmentais, nes jose nėra standartinių organų rinkinių ir jie vystosi ne taip, kaip tikrieji segmentai. Priekinėje dalyje, vadinamoje prostomium (gr. προ – „priešais“ ir στομα reiškia „burna“), yra smegenys ir jutimo organai, o gale, vadinama pygidium (gr. πυγιδιον, reiškia „maža uodega“). yra išangė, dažniausiai apatinėje pusėje. Pirmoji dalis už prostomiumo, vadinama peristomiu (graikiškai περι – „aplink“ ir στομα reiškia „burna“), kai kurie zoologai mano, kad tai nėra tikras segmentas, tačiau kai kurių daugiašakių kūne yra chetų ir priedų. kiti segmentai. [7]
Segmentai vystosi po vieną iš augimo zonos, esančios prieš pat pygidiumą, todėl jauniausias anelido segmentas yra prieš pat augimo zoną, o peristomiumas yra seniausias. Šis modelis vadinamas teloblastiniu augimu. [7] Kai kurios anelidų grupės, įskaitant visas dėles, [14] turi fiksuotą maksimalų segmentų skaičių, o kitos papildo segmentus per visą savo gyvenimą. [11]
Prieglobsčio pavadinimas kilęs iš lotyniško žodžio anelis, reiškiantis „mažas žiedas“. [5]
Kūno sienelė, chaetae ir parapodija Redaguoti
Annelidų odelės yra pagamintos iš kolageno skaidulų, dažniausiai sluoksniais, besisukančių kintamomis kryptimis taip, kad skaidulos kerta viena kitą. Juos išskiria vienos ląstelės gilusis epidermis (atokiausias odos sluoksnis). Kai kuriems jūriniams anelidams, gyvenantiems vamzdeliuose, trūksta odelių, tačiau jų vamzdeliai yra panašios struktūros, o gleives išskiriančios liaukos epidermyje apsaugo jų odą. [7] Po epidermiu yra derma, sudaryta iš jungiamojo audinio, kitaip tariant, ląstelių ir neląstelinių medžiagų, tokių kaip kolagenas, derinys. Po juo yra du raumenų sluoksniai, kurie išsivysto iš celomo (kūno ertmės) pamušalo: žiediniai raumenys susitraukdami padaro segmentą ilgesnį ir plonesnį, o po jais yra išilginiai raumenys, dažniausiai keturios skirtingos juostelės, [20] kurių susitraukimai. padaryti segmentą trumpesnį ir storesnį. [7] Kai kurie anelidai taip pat turi įstrižus vidinius raumenis, kurie jungia apatinę kūno dalį su kiekviena puse. [20]
Anelidų sruogos („plaukeliai“) išsikiša iš epidermio, kad užtikrintų sukibimą ir kitas galimybes. Paprasčiausi yra nesujungti ir sudaro suporuotus ryšulius kiekvieno segmento viršuje ir apačioje. Jas turinčių anelidų parapodijų („galūnų“) galiukai dažnai būna sudėtingesni cheta, pavyzdžiui, sujungti, šukuoti ar užkabinti. [7] Chetai yra pagaminti iš vidutiniškai lankstaus β-chitino ir yra suformuoti iš folikulų, kurių kiekvieno apačioje yra chetoblastinė ("plauką formuojanti") ląstelė ir raumenys, galintys chetą išplėsti arba atitraukti. Chetoblastai gamina chetas, formuodami mikrovillius, plonus plaukus primenančius priauginimus, kurie padidina chetos sekretui skirtą plotą. Kai cheta baigiasi, mikrovileliai pasitraukia į chetoblastą, palikdami lygiagrečius tunelius, kurie eina beveik per visą chetos ilgį. [7] Taigi anelidų cheta struktūriškai skiriasi nuo nariuotakojų šerelių („šerių“), kurie yra pagaminti iš standesnio α-chitino, turi vieną vidinę ertmę ir yra pritvirtinti prie lanksčių jungčių negiliose odelių duobutėse. . [7]
Beveik visi daugiasluoksniai kūnai turi parapodijas, kurios veikia kaip galūnės, o kitose pagrindinėse anelidų grupėse jų trūksta. Parapodijos yra nesujungti suporuoti kūno sienelės tęsiniai, o jų raumenys yra kilę iš žiedinių kūno raumenų. Viduje juos dažnai palaiko vienas ar keli dideli, stori chetae. Įkastų ir vamzdeliuose gyvenančių daugiasluoksnių želmenų parapodijos dažnai yra tik gūbriai, kurių antgaliuose yra kabliukų. Aktyviuose vijokliniuose ir plaukikuose parapodijos dažnai skirstomos į dideles viršutines ir apatines irklas, esančias ant labai trumpo kamieno, o irklas dažniausiai dengia chetae, o kartais ir cirri (susilieję blakstienų ryšuliai) ir žiaunomis. [20]
Nervų sistema ir pojūčiai Redaguoti
Smegenys paprastai sudaro žiedą aplink ryklę (gerklę), susidedantį iš poros ganglijų (vietinių valdymo centrų) virš ir prieš ryklę, sujungtų nervų virvelėmis abiejose ryklės pusėse su kita ganglijų pora tiesiai po ir už jos. tai. [7] Daugiašaknių smegenys dažniausiai yra priekyje, o kliteliatų smegenys yra peristomijoje arba kartais pirmame segmente už prostomiumo. [30] Kai kurių labai judrių ir aktyvių daugiasluoksnių ląstelių smegenys yra išsiplėtusios ir sudėtingesnės, matomos užpakalinės, vidurinės ir priekinės smegenų dalys. [20] Likusi centrinės nervų sistemos dalis, ventralinis nervas, paprastai yra panašus į kopėčias, susidedantis iš nervų virvelių poros, einančių per apatinę kūno dalį ir kurių kiekviename segmente yra suporuotų ganglijų, sujungtų skersinis ryšys. Iš kiekvieno segmentinio gangliono išsišakojusi vietinių nervų sistema patenka į kūno sienelę ir apjuosia kūną. [7] Tačiau daugumoje daugiasluoksnių dviejų pagrindinių nervų virvelės yra susiliejusios, o vamzdeliuose gyvenančiose šeimose Owenia vienas nervinis stygas neturi ganglijų ir yra epidermyje. [11] [31]
Kaip ir nariuotakojų, kiekvieną raumenų skaidulą (ląstelę) valdo daugiau nei vienas neuronas, o skaidulos susitraukimų greitis ir galia priklauso nuo bendro visų jos neuronų poveikio. Stuburiniai gyvūnai turi skirtingą sistemą, kurioje vienas neuronas kontroliuoja raumenų skaidulų grupę. [7] Daugumos annelidų išilginiuose nervų kamienuose yra milžiniški aksonai (nervinių ląstelių išvesties signalo linijos). Didelis jų skersmuo sumažina jų atsparumą, o tai leidžia itin greitai perduoti signalus. Tai leidžia šiems kirminams greitai pasitraukti iš pavojaus sutrumpindamos savo kūną. Eksperimentai parodė, kad milžiniškų aksonų pjovimas apsaugo nuo šios pabėgimo reakcijos, bet neturi įtakos normaliam judėjimui. [7]
Jutikliai pirmiausia yra pavieniai elementai, aptinkantys šviesą, chemines medžiagas, slėgio bangas ir kontaktą, ir yra ant galvos, priedų (jei yra) ir kitose kūno dalyse. [7] Nuchal ("ant kaklo") organai yra poriniai, blakstienoti dariniai, randami tik daugiašakėse ląstelėse, ir manoma, kad jie yra chemosensoriai. [20] Kai kurie daugiasluoksniai kūnai taip pat turi įvairių okelių ("mažų akių") derinių, kurie nustato kryptį, iš kurios sklinda šviesa, ir fotoaparato akis arba sudėtines akis, kurios tikriausiai gali sudaryti vaizdus. [31] Sudėtinės akys tikriausiai išsivystė nepriklausomai nuo nariuotakojų akių. [20] Kai kurios vamzdinės kirmėlės žuvų šešėliams aptikti naudoja plačiai išplitusias oceles, kad jos galėtų greitai pasitraukti į savo vamzdelius. [31] Kai kurie urvuose ir vamzdeliuose gyvenantys daugiasluoksniai kūnai turi statocistų (pasvirimo ir pusiausvyros jutiklius), kurie nurodo, kuri pusė yra žemyn. [31] Kai kurios daugiašakių genčių galvų apatinės pusės turi delnus, kurie naudojami ir maitinant, ir kaip „čiuptuvai“, o kai kurios iš jų taip pat turi antenas, kurios yra struktūriškai panašios, bet tikriausiai naudojamos daugiausia kaip „čiuptuvai“. [20]
Coelom, judėjimas ir kraujotakos sistema Redaguoti
Daugumoje anelidų kiekviename segmente yra pora celomatų (kūno ertmių), atskirtų nuo kitų segmentų pertvaromis ir vienas nuo kito vertikaliomis mezenterijomis. Kiekviena pertvara sudaro sumuštinį su jungiamuoju audiniu viduryje ir mezoteliu (membrana, kuri tarnauja kaip pamušalas) iš ankstesnių ir paskesnių segmentų iš abiejų pusių. Kiekviena mezenterija yra panaši, išskyrus tai, kad mezotelis yra kiekvienos celomatų poros pamušalas, o kraujagyslės ir, daugiasluoksnėse ląstelėse, pagrindinės nervų virvelės yra įterptos į jį. [7] Mezotelis sudarytas iš modifikuotų epitelio-raumenų ląstelių [7], kitaip tariant, jų kūnai sudaro epitelio dalį, tačiau jų pagrindai tęsiasi ir sudaro raumenų skaidulas kūno sienelėje. [32] Mezotelis taip pat gali sudaryti radialinius ir apskritus raumenis ant pertvarų ir žiedinius raumenis aplink kraujagysles ir žarnas. Mezotelio dalyse, ypač žarnyno išorėje, taip pat gali susidaryti chloragono ląstelės, kurios atlieka panašias funkcijas kaip ir stuburinių gyvūnų kepenys: gamina ir kaupia glikogeną ir riebalus, gamina deguonies nešiklį hemoglobiną, skaidantį baltymus ir paverčiančias azoto atliekas amoniaku. o karbamidas turi būti pašalintas. [7]
Daugelis anelidų juda dėl peristaltikos (susitraukimo ir išsiplėtimo bangos, plaukiančios išilgai kūno) [7] arba lenkia kūną, kai šliaužioja ar plaukia naudojant parapodiją. [33] Šių gyvūnų pertvaros leidžia žiediniams ir išilginiams raumenims pakeisti atskirų segmentų formą, kiekvieną segmentą paverčiant atskiru skysčio pripildytu „balionu“. [7] Tačiau pertvaros dažnai būna nepilnos aneliduose, kurie yra pusiau sėslūs arba nejuda dėl peristaltikos ar parapodijų judesių – pavyzdžiui, kai kurios juda plakdamos kūno judesius, kai kurios mažos jūrinės rūšys juda blakstienomis. (smulkiųjų raumenų plaukelių), o kai kurie urvininkai apverčia savo ryklę (gerklę) iš vidaus, kad prasiskverbtų į jūros dugną ir įsitrauktų į jį. [7]
Celomatų skystyje yra celomocitų ląstelių, kurios apsaugo gyvūnus nuo parazitų ir infekcijų. Kai kurių rūšių celomocituose taip pat gali būti kvėpavimo pigmento – kai kuriose rūšyse raudono hemoglobino, kitų – žalio chlorokruorino (ištirpusio plazmoje) [20] – ir jie gali užtikrinti deguonies transportavimą savo segmentuose. Kvėpavimo pigmentas taip pat ištirpsta kraujo plazmoje. Rūšys, kurių pertvaros yra gerai išsivysčiusios, paprastai taip pat turi kraujagysles, einančias visą kūną virš ir po žarna, o viršutinė kraujas teka į priekį, o apatinė – atgal. Kapiliarų tinklai kūno sienelėje ir aplink žarnyną perneša kraują tarp pagrindinių kraujagyslių ir į segmento dalis, kurioms reikia deguonies ir maistinių medžiagų. Abi pagrindinės kraujagyslės, ypač viršutinė, gali pumpuoti kraują susitraukdamos. Kai kurių sliekų priekinis viršutinės kraujagyslės galas yra padidintas raumenimis, kad susidarytų širdis, o daugelio sliekų priekiniuose galuose kai kurios kraujagyslės, jungiančios viršutinę ir apatinę pagrindines kraujagysles, veikia kaip širdys. Rūšys, kurių pertvaros yra prastai išsivysčiusios arba kurių nėra, paprastai neturi kraujagyslių ir, tiekdamos maistines medžiagas ir deguonį, priklauso nuo kraujotakos koelome. [7]
Tačiau dėlių ir jų artimiausių giminaičių kūno struktūra yra labai vienoda grupėje, tačiau labai skiriasi nuo kitų anelidų, įskaitant kitus Clitellata narius. [14] Dėlėse nėra pertvarų, kūno sienelės jungiamojo audinio sluoksnis yra toks storas, kad užima didelę kūno dalį, o dvi koelomos yra plačiai atskirtos ir driekiasi per visą kūną. Jie veikia kaip pagrindinės kraujagyslės, nors yra greta, o ne viršutinės ir apatinės. Tačiau jie yra padengti mezoteliu, kaip ir celomata, ir skirtingai nuo kitų anelidų kraujagyslių. Dėlių priekiniuose ir galiniuose galuose paprastai naudojami siurbtukai, kad judėtų kaip colių kirminai. Išangė yra viršutiniame pygidium paviršiuje. [14]
Redaguoti kvėpavimą
Kai kurių anelidų, įskaitant sliekus, visas kvėpavimas vyksta per odą. Tačiau daugelis daugiasluoksnių ir kai kurių klitelitų (grupė, kuriai priklauso sliekai) turi žiaunas, susijusias su dauguma segmentų, dažnai kaip daugiašakių parapodijų tęsinys. Vamzdžių gyventojų ir urvų žiaunos paprastai susitelkia aplink tą, kurio galas yra stipresnis. [20]
Maitinimas ir išskyrimas Redaguoti
Šėrimo struktūros burnos srityje labai skiriasi ir turi mažai ryšio su gyvūnų mityba. Daugelio daugiasluoksnių giminaičių ryklė yra raumeninga, kurią galima išversti (pasukti, kad ją išplėstų). Šių gyvūnų keliuose pirmuosiuose segmentuose dažnai trūksta pertvarų, todėl, susitraukus šių segmentų raumenims, staigus skysčių slėgio padidėjimas iš visų šių segmentų labai greitai išverčia ryklę. Dvi šeimos, Eunicidae ir Phyllodocidae, turi išsivysčiusius žandikaulius, kurie gali būti naudojami grobiui sugauti, augalijos gabalams nugraužti arba negyvoms ir pūvančioms medžiagoms sugriebti. Kita vertus, kai kurie plėšrūnai daugiasluoksniai neturi nei žandikaulių, nei amžinų ryklių. Selektyvūs nuosėdų tiektuvai paprastai yra vamzdeliuose ant jūros dugno ir naudoja paltus, kad surastų maisto daleles nuosėdose ir nušluostydamos jas į burną. Filtro tiektuvuose naudojami delnų „vainikėliai“, padengti blakstienomis, kurie nuplauna maisto daleles link burnos. Neselektyvūs telkinių tiektuvai sugeria dirvožemį arba jūros nuosėdas per žiotis, kurios paprastai nėra specializuotos. Kai kurių klitelitų burnos dangteliuose yra lipnių pagalvėlių, o kai kurios iš jų gali nuversti pagalvėles, kad gaudytų grobį. Dėlės dažnai turi nuolatinį snukį arba raumeningą ryklę su dviem ar trim dantimis. [20]
Žarnynas paprastai yra beveik tiesus vamzdelis, paremtas mezenteriais (vertikalios pertvaros segmentuose), ir baigiasi išange apatinėje pygidium pusėje. [7] Tačiau vamzdeliuose gyvenančių Siboglinidae šeimos narių žarnyną blokuoja patinusi gleivinė, kurioje gyvena simbiotinės bakterijos, kurios gali sudaryti 15 % viso kirminų svorio. Bakterijos paverčia neorganines medžiagas, tokias kaip vandenilio sulfidas ir anglies dioksidas iš hidroterminių angų arba metaną iš prasisunkusių medžiagų, į organines medžiagas, kurios maitina save ir savo šeimininkus, o kirminai išplečia savo delnus į dujų srautus, kad sugertų bakterijoms reikalingas dujas. . [20]
Annelidai su kraujagyslėmis naudoja metanefridiją tirpioms atliekoms pašalinti, o neturintys protonefridijos. [7] Abiejose šiose sistemose naudojamas dviejų etapų filtravimo procesas, kurio metu pirmiausia išgaunami skysčiai ir atliekos, o jos vėl filtruojamos, kad vėl būtų absorbuojamos pakartotinai naudojamos medžiagos, o toksiškos ir panaudotos medžiagos išpilamos kaip šlapimas. Skirtumas tas, kad protonefridijos sujungia abi filtravimo stadijas tame pačiame organe, o metanefridijos atlieka tik antrą filtravimą ir pirmąją remiasi kitais mechanizmais – anneliduose specialios filtravimo ląstelės, esančios kraujagyslių sienelėse, praleidžia skysčius ir kitas mažas molekules. celominis skystis, kur jis cirkuliuoja į metanefridiją. [34] Anneliduose taškai, kuriuose skystis patenka į protonefridiją arba metanefridiją, yra priekinėje pertvaros pusėje, o antrosios pakopos filtras ir nefridiopora (išėjimo anga kūno sienelėje) yra kitame segmente. Dėl to užpakalinis segmentas (prieš augimo zoną ir pygidiumą) neturi struktūros, kuri išgautų jo atliekas, nes nėra kito segmento, kuris jas filtruotų ir pašalintų, o pirmame segmente yra ištraukimo struktūra, kuri perduoda atliekas į antrąjį. bet jame nėra struktūrų, kurios pakartotinai filtruoja ir išleidžia šlapimą. [7]
Reprodukcija ir gyvavimo ciklas Redaguoti
Nelytinis dauginimasis Redaguoti
Daugiašakės gali daugintis nelytiškai, dalijantis į dvi ar daugiau dalių arba išskirdamos naują individą, o tėvas išlieka pilnavertis organizmas. [7] [35] Kai kurie oligochetai, pvz Auloforas furcatus, atrodo, kad dauginasi visiškai nelytiškai, o kiti dauginasi nelytiškai vasarą ir lytiškai rudenį. Nelytinis oligochaetų dauginimasis visada vyksta dalijant į dvi ar daugiau dalių, o ne pumpuruojant. [11] [36] Tačiau dėlės niekada nebuvo matyti nelytiškai dauginantis. [11] [37]
Dauguma daugiasluoksnių ir oligochaetų taip pat naudoja panašius mechanizmus, kad atsinaujintų patyrus žalą. Dvi daugiašakių genčių, Chaetopterus ir Dodecaceria, gali atsinaujinti iš vieno segmento, o kiti gali atsinaujinti net nuėmus galvas. [11] [35] Annelidai yra sudėtingiausi gyvūnai, galintys atsinaujinti po tokios didelės žalos. [38] Kita vertus, dėlės negali atsinaujinti. [37]
Tyrimas: ar galite įvertinti žmogaus ūgį pagal jo kaulų ilgį?
Netoliese esančioje statybų zonoje darbuotojai padarė stulbinantį atradimą. Jie atskleidė keletą kaulų, kurie atrodo kaip prieš kurį laiką palaidoti. Jūs esate teismo antropologų komandos, kuri buvo pakviesta analizuoti šiuos kaulus, dalis. Deja, kaulus smarkiai apgadino statybinė technika. Visi kaulai buvo sumaišyti, keli sutraiškyti. Tačiau manote, kad galite naudoti likusius kaulus, kad nustatytumėte kiekvieno asmens kūnų skaičių ir ūgį.
Kai kūnas atrandamas, svarbu kuo daugiau sužinoti iš palaikų. Teismo medicinos antropologai naudoja matematines formules, kad įvertintų asmens ūgį pagal tam tikrų jų kūno kaulų ilgį.
1. Naudodami liniuotę arba matavimo juostą, išmatuokite šlaunikaulio ilgį centimetrais. This is the large bone that runs from your hip socket to your knee cap. The bone that sticks out near your hip is part of the femur and is called the greater trochanter. Record this information in the table below for you and your lab partners. Gather data from at least three people in your class.
*Use the femur length and the chart to calculate your height and compare that to your actual height. If your race isn't listed, you can find more formulas online.
2. Next, measure the length of your tibia. Start at the the tibial tuberosity (bump on your shin) to the medial malleolus, the bump on your ankle. Use the chart to calculate your height based on the tibia.
3. Finally, measure your ulna length by bending your arm and measuring from the proximal end of the ulna (elbow bump) to the distal end, the styloid process of the ulna. The styloid process is visible as a bump near your wrist. Use the chart to calculate your height based on the ulna.
4. Complete the table for at least 3 members in your group or class.
Vardas: |
Actual Height (cm) |
Femur Length (cm) |
Calculated Height (cm) |
Tibia Length (cm) |
Calculated Height (cm) |
Ulna Length (cm) |
Calculated Height (cm) |
Construction Site
The following bones were recovered from the construction site. A fellow forensic anthropologist has already classified the bones by sex and race. Using the mathematical formulas, calculate the approximate height of each individual.
Bone # | Bone Type | Length (cm) | Lenktynės | Sex | Calculated Height (cm) |
1 | Humerus | 38.2 | Caucasian | Patinas | |
2 | Femur | 44.0 | African-American | Moteris | |
3 | Ulna | 25.4 | Caucasian | Patinas | |
4 | Femur | 52.4 | Caucasian | Patinas | |
5 | Femur | 43.9 | African-American | Moteris | |
6 | Tibia | 45.7 | Caucasian | Patinas |
Discussion Questions:
1. Is it possible that any of the bones came from the same person? Which bones do you think might be the same person and provide an explanation for WHY you think so.
2. What is the minimum number of bodies buried at this site? What is the maximum number of bodies buried at this site? Explain your reasoning.
3. Consider a case where two females have the same femur length. Would you expect those females to be the exact same height? Kodėl ar kodėl ne?
4. On the formula table, there is a symbol shown as ± . What does this symbol mean?
5. Consider your calculated heights and your actual height. Are they within the range that was expected. Suggest a reason for why a person&rsquos calculated height might not be accurate.
Measuring a Circle
An easy way to estimate the value of pi is to divide a circle's circumference by its diameter. Measure the circumference of a cylinder or circle using a thin piece of string. (The circumference is the distance around the circle.)
Try to match the edge of the circle to the string as best as you can the more closely your string matches the circle's circumference, the more accurate your measurement of pi will be. Mark or cut the string, and use a ruler to measure the string's length.
Measure the diameter of the circle with your ruler. Make certain the ruler goes through the center of the circle, as a small error here can lead to a big error in the calculation.
Divide the circumference you found in Step 1 by the diameter you found in Step 2. For example, if your circumference from Step 1 is 44 centimeters, and your diameter is 14 cm, then 44/14=3.14.
How to calculate magnification of a cell- help!
I know the equation to calculate magnification but I don't quite know how to substitute values, convert them etc. This is what I've done so far.
Observed size= 40 micrometres
Actual size= 60mm =60 000 micrometres
40/60,000= 0.000666666 < that doesn't look right
Ne tai, ko ieškote? Išbandyk&hellip
Magnification= size of image/ size of object = (40x 10^-6)/(60x10^-3)= 6.67x 10^-4
I'm not sure whether it's right.
Have you got observed and actual reversed?
probably worth 1 out of 2 points for remebering to convert both into the same units anyway.
(Original post by Sighrawr)
I know the equation to calculate magnification but I don't quite know how to substitute values, convert them etc. This is what I've done so far.
Observed size= 40 micrometres
Actual size= 60mm =60 000 micrometres
40/60,000= 0.000666666 < that doesn't look right
are you sure you've not got the values mixed up, because a cell which is 60mm would be huge, so maybe you've got the observed size and actual sized mixed up.
if not then your answer is correct, because the observed size is alot smaller than the actual size in this case.
How to Calculate Percentage Increase
This article was co-authored by Grace Imson, MA. Grace Imson is a math teacher with over 40 years of teaching experience. Grace is currently a math instructor at the City College of San Francisco and was previously in the Math Department at Saint Louis University. She has taught math at the elementary, middle, high school, and college levels. She has an MA in Education, specializing in Administration and Supervision from Saint Louis University.
„wikiHow“ pažymi straipsnį kaip skaitytojo patvirtintą, kai sulaukia pakankamai teigiamų atsiliepimų. This article has 17 testimonials from our readers, earning it our reader-approved status.
This article has been viewed 2,588,704 times.
Knowing how to calculate percentage increase is useful in a variety of situations. For instance, even when watching the news, you'll often hear a change described in large numbers without any percentage to give them context. If you calculate the percentage increase and discover it's actually less than 1%, you'll know not to believe the scare stories. Calculating percentage increase is as simple as dividing the size of the increase by the original amount.
How Do You Calculate a Room's Maximum Occupancy?
To calculate a room's maximum occupancy, determine factors such as the area of the room, the available space in the room, the number of useful exits and the height of the ceiling. Calculate a basic estimation of a room's maximum occupancy by dividing the available floor space in square feet by 36.
Measure the width and length of the room in feet to calculate the area of the room. Multiply these two values to determine the area of the room in square feet.
To calculate the approximate value of available floor space, find the approximate value of the space that's being obstructed by fixed structures, such as columns and pieces of furniture. Subtract this value from the area of the room to get an approximation of the floor space that is available for occupancy.
Divide the available floor space by 36 to get an approximation of the maximum occupancy of the room. The number 36 comes from the notion that every person should be allotted a minimum space of 6 feet of length and width, which means that the recommended space that one person should have is equal to 36 square feet.
How do you determine the length of an annelid? – Biologija
Chloroplasts play a key role in the energy economy of the cells that harbor them. Chloroplasts are less well known than their mitochondrial counterparts, though they are usually much larger and have a key role in producing the reduced compounds that store energy which is then broken down in mitochondria. Chloroplasts have the pivotal role in the biosphere of carrying out the chemical transformations linking the inorganic world (CO2) to the organic world (carbohydrates). This feat of chemical transformation enables the long-term storage of the fleeting sun’s energy in carbohydrates and its controlled release in energy currencies such as ATP and NADPH. Those same carbon compounds also serve to build all the biomass of cells as a result of downstream metabolic transformations.
Figure 1: Electron micrograph of a chloroplast. The light reactions occur in the membrane bound compartment called the thylakoid. There are usually about 40-60 stacks of disks termed grana per chloroplast (BNID 107013), covering 50-70% of the thylakoid membrane surface (BNID 107016). Each single stack has a diameter of 0.3-0.6 μm (BNID 107014). Sugar produced is stored in starch granules. (Adapted from B. Alberts et al, Mol. Biol. of the Cell, 4th ed., Figure 14-34, Garland science).
Chloroplasts in vascular plants range from being football to lens shaped and as shown in Figure 1, have a characteristic diameter of ≈4-6 microns (BNID 104982, 107012), with a mean volume of ≈20 μm 3 (for corn seedling, BNID 106536). In algae they can also be cup-shaped, tubular or even form elaborate networks, paralleling the morphological diversity found in mitochondria. Though chloroplasts are many times larger than most bacteria, in their composition they can be much more homogenous, as required by their functional role which centers on carbon fixation. The interior of a chloroplast is made up of stacks of membranes, in some ways analogous to the membranes seen in the rod cells found in the visual systems of mammals. The many membranes that make up a chloroplast are fully packed with the apparatus of light capture, photosystems and related complexes. The rest of the organelle is packed almost fully with one dominant protein species, namely, Rubisco, the protein serving to fix CO2 in the carbon fixation cycle. The catalysis of this carbon-fixation reaction is relatively slow thus necessitating such high protein abundances.
Figure 2: Chloroplasts in the moss Plagiomnium affine, found in old-growth boreal forests in North America, Europe and Asia, growing in moist woodland and turf. The shown lamina cells are elongated, with length of about 80 microns and width of 40 microns. These cells, as most plant cells, have their volume mostly occupied by large vacuoles so the cytoplasm and chloroplasts are at the periphery. Chloroplast also show avoidance movement, in which chloroplasts move from the cell surface to the side walls of cells under high light conditions to avoid photodamage. Used with permission from Ralf Wagner.
From: http://www.dr-ralf-wagner.de/Moose/Plagiomnium_affine.html
The number of chloroplasts per cell varies significantly between organisms and even within a given species can change significantly depending upon growth conditions. In the model algae Tyrimas DOCUMENT & IMAGE REPRODUCTION POLICY : You may copy & distribute any documents or images herein for non-profit, educational purposes, so long as original authorship credits are properly ascribed on documents & images. If you adapt or modify materials, then clear designation of modifications should be made, so that names of original author(s) & new author(s) are properly matched to components that each authored . Discovering and Investigating Paleozoic (Devonian) Microfossils [ NEW Hands-on inquiry with microfossils includes methods for collecting, isolating & handling. Presented at 2004 NABT & 2005 ABLE meetings [ M icrofossil images] [PowerPt- NABT] For hard copy, specify article(s) & give complete mailing address (school or home). Siųsti requests to: A Toolbox for Working With Living Invertebrates [Inexpensive materials & methods for collecting, handling & investigating living invertebrates. Excerpts from an article published in 26th Proceedings of Association for Biology Laboratory Education (ABLE). For hard copy, specify article(s) & give complete mailing address (school or home). Siųsti prašyti: Those Wonderful Worms (Lumbriculus variegatus) [Illustrated article Carolina Tips, Aug., 1996, vol. 59, Nr. 3, 4 pp]. ABLE-2003 : D ownloadable PowerPt files show freeze-frame images of invertebrate locomotion. Use with Invertebrate LocOlympics lab writeup (NOTE: Files vary from 500-1100 kB) SELECT >>
How do you determine the length of an annelid? – Biologija
Invertebrate Neurobiology
Publikacijos (htm) (pdf)
Teaching
Invertebrate Biology
Neurobiology / Bioethics
McWorm: Invertebrate Fast Food [Use Lumbriculus variegatus (blackworms) to study predation & feeding behaviors in Hydra [ hydra-A ] [ hydra-B ] Planaria, crayfish, Triops, leeches, ostracods & freshwater tropical fish. Co-author: K. Cain, 4 pp] [See predation at: http://www.kirkwood.cc.ia.us/faculty/bharvey/cbnmindex.htm Then, select: Species Interactions ] [COMMERCIAL KIT]
Days of Our Spineless Lives < PDF-file > [Interdisciplinary, creative writing activity. Students write a first-person essay incorporating researched answers to more than 30 questions about biology & natural history of an invertebrate. Co-authored with L. Ihrig 12 pp]
Americas Most Wanted Invertebrates < PDF-file > [Students integrate invertebrate biology content into a creative written/pictorial profile, resulting in a fugitive wanted poster. Activity parallels Days of Our Spineless Lives (above), co-authored with L. Ihrig10 pp]
New Views of Daphnids NEW [Simple method to restrain daphnids underwater on a tether, allowing unimpaired movements of appendages & clear view of daphnid anatomy, physiology & behavior. Many possible investigations 4 pp] [See: daphnid swimming] [daphnid eye rotation]
Low-Life Limericks [Invertebrate limericks NEW : hydra, tardigrade, centipede, millipede, planaria, brine shrimp, mite, leech, daphnid, freshwater jellyfish, snail, crayfish, spider, cockroach, & nematode illustrated 2 pp]
Vinegar Eels [Hard-to-find biology background about Turbatrix aceti, the vinegar eel (Phylum Nematoda). Isolation methods & ideas for student inquiry 4 pp] INTERACTIVE ANIMATION of nematode swimming] [ computations for vinegar eel swimming ]
Biological Smoke Detectors < pdf file > [Toxicology mini-manual, or primer, for students & teachers. Background info & ideas for using invertebrates for ecotoxicity testing. Ideas for student research & science fair projects. Kansas School Naturalist, t. 50 (1)1-15, Dec., 2003 - multiple copies available on request ]
Putting Your Best Root Forward: PORTFOLIO for a PLANT NEW [Assigned project in which students research & create an employment portfolio for a plant (= a showcase of ecological niche for a selected plant species).] NOTE: Plants are invertebrates, too! :-)
EMAIL: [email protected] PH: 515-294-8061 WEB: http://www.eeob.iastate.edu/faculty/DrewesC/htdocs/
MAIL: Charles Drewes, EEOB Dept, Rm 503 Sci-II Bldg, Iowa State University, Ames, IA 50011 USA
Microrulers [Make 10 microrulers for measuring small objects, under a dissecting scope, to the nearest 0.1 mm. Rulers are tiny, flexible & laminated. ]
Pencil Pipet Technique [Simple, reliable way to transfer small invertebrates in small fluid volumes using stretched plastic pipet or capillary tube. Deliver tiny blackworm fragments to Hydra arba Planaria to study prey capture & feeding 2 pp] [ stretch pipet ] NEW [suck up microfossils]
The Handy-Dandy FleX-Acto Invertebrate Detachment Tool [Simple tool for lab/field [ FleX-Acto tool ] Rapid, safe removal of invertebrates from rock, wood, glass surfaces. Detach planaria , hydra, NEW leech cocoon, snail egg mass , snails & caddisfly larvae, 2 pp]
Pour-Person Plankton Net [Cheap way to collect & concentrate zooplankton in lab or field. 2 pp] [ photo of net ]
Mini-Widgets [Simple, creature-friendly tools [ widgets ] for manipulating small, living invertebrates, such as molluscs, annelids, small crustaceans, insects, bryozoa, etc. Use instead of metal dissecting probes or toothpicks. 1p] NEW [pick up dry microfossils]
Making Flexible Foam Well Slides [Make simple, unbreakable, re-usable, non-seeping well slides from acetate sheets, foam tape, or foam sheets great for viewing small aquatic invertebrates with compound or dissecting microscope 2 pp] [ Foam slide ]
Tape Well Slides [Easy-to-make, unbreakable, leak-proof, clear-bottomed, well-slides with customizable well dimensions. Excellent for viewing aquatic oligochaetes, planaria, rotifers, pond water, etc.]
Many-view Mini-box [A 15-cent, reusable, leak-proof, small viewbox (= plastic spectrophotometric cuvet) with soft rubber cork [ minibox ] view living planaria, hydra, snails, zooplankton, small leeches, insects from all sides with stereo or compound scope 2 pp]
Vanduo < pdf file > [Compares desirable & undesirable sources of water for maintenance/culture of invertebrates 1 p]
Food for Aquatic Invertebrates [ Updated Food for brine shrimp, freshwater snails, freshwater oligochaetes, etc 2 pp]
New Light on Phototaxis and Phototropism [Make & use ultra-bright LEDs for phototaxis inquiry in invertebrates & phototropism in plants [ phototropism ]. Write-up has photobiology background, practical ideas, references, commercial sources/catalog numbers for components, circuit designs for battery/AC power.11 pp] NEW inquire [red-LED probe] [blue-LED probe] Phototaxis: [daphnids] [ostracods]
Auxiliary LED Illuminator System for Brock Microscopes NEW [ View-1 View-2 , View-3 .] ašnquire
ILLUM-11 high-brightness, low-heat microscope illuminator NEW [ILLUM-11 photo] ašnquire
Portascope [Portable low-power microscope. Ultra-bright LED provides sub-stage or above-stage lighting. Portascope w/canister LED Portascope with built-in LED: front view & side view] ašnquire
Biological Smoke Detectors < pdf file > [A toxicology mini-manual, or primer, for students or teachers. Background info & ideas for using invertebrates (e.g., Lumbriculus or earthworms) for ecotoxicity testing in student research or science fair projects. Kansas School Naturalist, vol 50:1-15, Dec, 2003 - multiple copies available on request ] [web version w/no figures].
EMAIL: [email protected] PH: 515-294-8061 WEB: http://www.eeob.iastate.edu/faculty/DrewesC/htdocs/
MAIL: Charlie Drewes, EEOB Dept, Rm 503 Sci-II Bldg, Iowa State University, Ames, IA 50011 USA
Lumbriculus variegatus: Commercial Sources NEW [List of sources for Lumbriculus variegatus (aquatic oligochaete) 1 p]
Culturing Lumbriculus variegatus
Lumbriculus variegatus: A Biology Profile [Background about taxonomy, lifestyle, reproduction, muscle, circulation & behavior of blackworms (Lumbriculus) - not found in general or advanced texts 4 pp]
Lumbriculus variegatus photos [ Habitat For Wormanity-A ] [ Habitat for Wormanity-B ] [ worm-1 ] [ worm-2 ] [ worm-3 ] [ worm anatomy ][Cross-sections]
Biology Facts about Mudworms < PDF file > [Brief summary of Lumbriculus (blackworm) biology 1 p]
As the Worm Turns [Investigate Lumbriculus crawling, swimming & reversal behavior Esu. Biol. Mokytojas, 61:438-442) INTERACTIVE ANIMATIONS: [Lumbriculus swimming] , [oligochaete crawling] [Lumbriculus body reversal] [ helical swimming computations ]
Heads or Tails NEW > Regeneration lab writeup [Detailed exercise on head & tail regeneration in Lumbriculus published in Proc.Assoc.for Biology Lab. Educ. (ABLE), Vol. 17, 1996 pp. 23-34. (pdf file) ] [ Regenerated fragment ] [ R egeneration animation]
Blackworms, Blood Vessel Pulsation and Drug Effects (pdf file) [Student lab exercise on pulse rate & drug effects in Lumbriculus dorsal blood vessel Esu. Biol. Mokytojas, 61:48-53. [View of dorsal & lateral blood vessels] See INTERACTIVE ANIMATIONS of pulsations: [mid-body pulse rate] [posterior pulse rate] [pulse velocity] NEW: [Worms in tape-well slides] NEW: [Calculate blood volume through dorsal vessel]
Non-invasive Recording of Giant Nerve Fiber Action Potentials from Freely Moving Oligochaetes [Record all-or-none spikes from giant nerve fibers in intact Lumbriculus Proc Assoc Biol Lab Educ (ABLE), 20:45-62, 1999. worm AP-1 worm AP-2 ] [Oligochaete Giant Axons -PowerPt slides]
Functional Organization of the Nervous System in Lumbriculus variegatus < pdf file > [Background information about Lumbriculus nervous system - not in general or advanced texts 4 pp] [Cross-sections]
Worm Limericks < PDF file > [Lumbriculus poezija 1 p]
Biological Smoke Detectors < pdf file > [Toxicology mini-manual, or primer, for students or teachers. Background info & ideas for using invertebrates (e.g., Lumbriculus or earthworms) for ecotoxicity testing in student research or science fair projects. Kansas School Naturalist, t. 50 (1)1-15, Dec., 2003 - multiple copies available on request ]
Through a Looking Glass - Version I [Inquiry-based lab utilizing worms tendencies to crawl into capillary tubes (thigmotaxis, gving clear views of internal/external features & functions in Lumbriculus, 8 pp co-author: B. Grosz] NEW [worms in tubes] [ worm anatomy ]
Through a Looking Glass - Version II < pdf file > [Inquiry-based lab exercise. View internal & external features of whole worms, Lumbriculus, or worm fragments, using flat-tipped culture tubes. 2 pp]
McWorm: Invertebrate Fast Food [Use Lumbriculus variegatus (blackworms) to study predatory attack & feeding behavior in Hydra [ hydra-A ] [ hydra-B ] Planaria , crayfish, Triops, leeches & freshwater tropical fish. Co-author: K. Cain. 4 pp] [COMMERCIAL KIT]
Papyrus terrestris [Build 24-inch-long model of oligochaete worm that shows biomechanics of peristaltic locomotion in oligochaete worms, including circular & longitudinal muscle actions, plus protraction & retraction of chaetae 1 p] [see oligochaete crawling] Žiūrėti video įrašą: Mausam hai dikkat ka Mausam hai (Lapkritis 2024).